تحسين اكثار نبات الاكينيسيا الوردية ومحتواها من بعض المركبات الفعالة باستخدام حامض التيروسين وحامض السالسيلك خارج الجسم الحي
محتوى المقالة الرئيسي
الملخص
تعد طريقة الاكثاربالبذورهي الطريقة السائدة في اكثار نبات الاكينيسيا الوردية ، يعاب عليها انخفاض نسبة الحصول على نباتات بسبب مايحكمها من عوامل منها عامل الفصل الذي يستغرق وقتًا طويلاً فضلا عن عدم التاكد من خلو النباتات الناتجة من مسببات المرضية. لقد أتاحت تقنية زراعة الأنسجة فرصًا متعددة لإنتاج مركبات الايض الثانوي بشكل مستمر ودون التقيد بموسم معين ، نظرًا لإمكانية التحكم في الظروف البيئية ومكونات الوسط الغذائي الذي يحتاجه النبات. أجريت الدراسة الحالية لمعرفة تأثير حامض الساليسيليك والتايروسين كبادئ ومعرفة مدى تاثيرهما على الاكثار وإنتاج بعض المركبات الثانوية في نبات الاكينيسيا خارج الجسم الحي ، وأظهرت النتائج تفوق المعاملة السالسيلك بتركيز 2 ملغم / لتر ، بتسجيلها اعلى متوسط لعدد الفروع المتكونة 33.6 فرع / جزء نباتي ، وعدد الأوراق 33.6 ورقة / جزء نباتي ، ووزن طازج وجاف 1.067 غم ، 0.058 غم على التوالي ، وتركيز إلايكنوكوسايد 291.3427 ميكروجرام / جرام وزن جاف ، بينما سجلت معاملة 100 ملغم / لتر من التايروسين الحد الأقصى لمتوسط عدد الأفرع 11.80 فرع / جزء نبات ، عدد الأوراق 11.80 ورقة / جزء نباتي ، وزن طازج وجاف (0.152 ؛ 0.023 جم) على التوالي ولكن في تركيز إشنكوسايد كانت معاملة 150 ملغم / لتر من التايروسين هي الافضل اذ سجلت 318.5203 ميكروغرام / جرام وزن جاف. هدفت هذه الدراسة إلى أن مشتقات حمض الكافيك مثل إشنكوسايد هي أحد المكونات الكيميائية النباتية الرئيسية لمستخلصات إلاكينيسيا و ان نظام زراعة الخلايا هو أداة لاستنبات الخلايا النباتية على نطاق واسع وعلى مدار العام، والتي تعد مصدرًا مستمرًا لإنتاج مركبات الايض الثانوية.
Received 08/05/2022
Revised 29/10/2022
Accepted 31/10/2022
Published 20/06/2023
تفاصيل المقالة
هذا العمل مرخص بموجب Creative Commons Attribution 4.0 International License.
كيفية الاقتباس
المراجع
Percival SS. Use of Echinacea in medicine. Biochem Pharmacol. 2000; 60: 155–158. Https//:doi.org/10.1016/s0006-2952(99)00413-x
Kindscher Kk. Wittenberg R. The naming and classification of Echinacea species .Chapter 9 from Echinacea herb medicine with a wild history book publishing by springer. 2016; p. 856. Https//:doi.org/10.1007/978-3-319-18156-1
Burlou-Nagy C, Bănică F, Jurca T, Gratiela Vicas L, Marian E, Muresa ME, et al. A Pallag4-Barnes. Echinacea purpurea (L.) Moench: Biological and Pharmacological Properties. A Review. Plants. 2022; 11: 1244. Https//:doi.org/10.3390/plants11091244
Gupta M, Sharma D, Sharma A, kumari V, Goshain OP. A Review on Purple Cone Flower (Echinacea purpurea L. Moench). J Pharm Res. 2012; 5(8): 4076-4081. Https//:doi.org/10.3390/plants11091244.
Gajalakshmi S, Vijayalakshmi S, Devirajeswari V. Echinacea purpurea– A potent Immuno stimulant. Int J Pharm Sci Rev Res. 2012; 14(2): 47‐52. Https//:doi.org/10.1007/978-94-007-7395-0_23
Qayyum M, Gul M, Bajwa MA, Perveen R, Ashiq K, Gul M, et al. Phytoconstituents and Pharmacological Profile of Echinacea purpurea. Int J Biosci. 2021; 19(3): 66-72. Https//:doi.org/10.12692/ijb/19.3.66-72
Ruveyde T, Kipcak S ,Ghiyasi M ,Tuncturk M. The determination of gibberellic acid effects on seed germination of Echinacea purpurea (L) Moench under salt stress. Int J Agric Environ Food Sci 2019; 3(2):101-105. Https//:doi.org/10.31015/JAEFS.2019.2.8
Yurteri E, Aykutlu AO, Kuplemez H, Seyis F. Effects of stratification and moisturizing treatments on breaking seed dormancy in tow Echinacea species. Fresenius Environ Bull. 2021; 30 (02A): 1661-1665.
Kildisheva OA, Erickson TE, Madsen MD, Dixon KW. Seed germination and dormancy traits of forbs and shrubs important for restoration of North American dryland ecosystems. Plant Bio. 2019; 21(3): 458-469. Https//:doi.org/10.1111/plb.12892
Karrupusamy S. A review on trends in production secondary metabolites from higher plants by in vitro tissue organ and cell cultures. J Med Plants Res. 2009; 3 (13):1222-1239. Https//:doi.org/10.5897/JMPR.9000026
Dornenburg H. Evaluation of immobilization effects on metabolic activities and productivity in plant cell processes. Process Biochem. 2004; 39: 1369–1375. Https//:doi.org/10.1016/S0032-9592(03)00262-0
Salah G S. Efeect of plant growth regulators on callus induction and rutin production of Ricinus communis L. plant. Baghdad Sci J. 2017, 4(3): 461-468.
Habeeb H M, Saleh S G, Jazaa LA, Jasim BA. Detection of some active compounds and vitamins increasing in Aleo vera callus culture. Baghdad Sci J. 2012; 9(1): 18-22.
Rady M R, Aboul-Enein A M, Ibrahim MM. Active compounds and biological activity of in vitro cultures of some Echinacea purpurea varieties. Bull Natl Res Cent. Centre. 2018; 42(20): 1-12. Https//:doi.org/10.1186/s42269-018-0018-1
Mehrpooya Z, Abdoli M, Talebian M R. Effect of salicylic acid and yeast extract on caffeic acid derivatives production in Echinacea purpurea L. J Med Plants. 2021; 20(78): 36-47. Https//:doi.org/10.52547/jmp.20.78.36
Fariman ZK, Azizi M, Noori S. Seed Germination and Dormancy Breaking Techniques for Echinacea purpurea L. J Biol Eneviron Sci. 2011; 5(13): 7-10.
Brown PN, Chan M, Paley L, Betz JM. Determination of Major Phenolic Compounds in Echinacea spp.Raw. Materials and Finished Products by High-Performance Liquid Chromatography with Ultraviolet Detection: Single-Laboratory Validation Matrix Extension. J AOAC Int. 2011; 94(5): 1400–1410. Https//:doi.org/10.5740/jaoacint.11-142.
Goodhart PW, JTNM Thissen.Biometric genstat procedure library manual 18th Edition .2016. P. 192. https://www.wur.nl/upload_mm/a/4/2/df2e8df6-1985-47a8-85ed-ac86cc896d99_Biometris-18ed.pdf
Bakry BA, Sadek MA, El-Monem AAA. Physiological aspects of tyrosine and iochemical constituents of peanut plants. Pak J Biol Sci. 2020; 23(3): 375-384. Https//:doi.org/10.1111/j.0006-341x.2000.00
Talaat IM, Khattab HI, Ahmed AM. Changes in growth, hormones levels and essential oil content of Ammi visnaga L. plants treated with some bi regulators. Saudi J Biol Sci. 2014; 21(4): 355-365. Https//:doi.org/10.1016/j.sjbs.2013.10.008
KhanW, Prithviraj B, Smith DL. Photosynthetic responses of corn and soybean to foliar application of salicylates. J Plant physiol. 2003; 160: 485-492. Https//:doi.org/10.1078/0176-1617-00865
Davies PJ. Plant Hormones Biosynthesis Signal Transduction, Action, Kluwer Academic Publishers. 2010; P. 339. Https//:doi.org/10.1007/978-1-4020-2686-7.
SinghB, Usha K. Salicylic acid induced physiological and biochemical changes in wheat seedlings under water stress. Plant Growth Regul. 2003; 39: 137-141. https://doi.org/10.1023/A:1022556103536
Kuzel S, Vydra J, Triska J, Vrchotova N, Hruby M, Cigler P. Elicitation of pharmacologically active substances in an intact medical plant. J Agric Food Chem. 2009; 57: 7907-7911. Https//:doi.org/10.1021/jf9011246
Ghasemi PA, Nekoei M, Rahimmalek M, Malekpoor F. Chemical composition and yield of essential oil from lemonbalm (Melissa officinalis L.) under foliarapplications of jasmonic and salicylic acids. Biocatal Agric Biotechnol. 2019; 19: 101144. Https//:doi.org/10.1016/j.bcab.2019.101144
Giri CC, Zaheer M. Chemical elicitors versus secondary metabolite production in vitrousing plant cell, tissue and organ cultures: recent trends and a sky eye view appraisal. Plant Cell, Tissue Organ Cult. 2016; 126: 1-18. Https//:doi.org/10.1007/s11240-016-0985-6
Ramirez EK, Vidal LH, Hidalgo D, Moyano E, Golenioswki M, Cusidó RM , Palazon J. Elicitation, an effective strategy for the biotechnological production of bioactive high-added value compounds in plant cell factories. Molecules 2016; 21: 182. Https//:doi.org/10.3 390/molecules21020182.
Ruiz GY, Gómez PE. Elicitors: a tool for improving fruit phenolic content. Agriculture 2013; 3: 33-52. Https//:doi.org/10.3390/agriculture3010033
Ghasemzadeh A, Jaafar HZ, Karimi E, Ibrahim MH. Combined effect of CO2 enrichm -ent and foliar application of salicylic acid on the production and antioxidant activities of anthocyanin, flavonoids and isoflavonoids from ginger. BMC Complement Altern Med. 2012; 12: 229. Https//:doi.org/10.1186/1472-6882-12-229
Obinata N, Yamakawa T, Takamiya M, Tanaka N. Effects of salicylic acid on the production of procyanidin and anthocyanin in cultured grape cell. Plant Biotechnol. 2003; 20(2): 105-111. Https//:doi.org/10.5511/plantbiotechnology.20.105
El-Naggar HM. Phenylalanine ammonia-lyase (PAL) gene activity in response to proline and tyrosine in rosemary callus culture. Afr J Biotechnol. 2012; 11: 159–163. Https//:doi.org/10.5897/AJB11.2585.