سمية الكلوربيريفوس على ذوات الصدفتين في المياه العذبة (Unio tigridis) وتأثيراتها على المؤشرات الحيوية

محتوى المقالة الرئيسي

Nihal Suhail Hanna
https://orcid.org/0000-0002-4476-0461
Yahya Ahmed Shekha
https://orcid.org/0000-0003-4540-1222

الملخص

للذوات الصدفیتین وظيفة هامة في المياه العذبة إذ تقوم بعملية تصفية المياه ولكون مكوثهم في البيئة القعرية يؤثرون على زيادة نسبة الأوكسجين مما يؤدي الى بيئة قاعیه‌ اكثر حيوية. الهدف من الدراسة هو معرفة كيفية تأثير الكلوربيريفوس على الخصائص الكيميائية الحيوية في ذات الصدفيتيين في المياه العذبة Unio tigridis. تم جمع حوالي 180 كائن إضافة إلى عينة من موارود مياه قنديل على نهر الزاب الكبير في محافظة اربيل – العراق. بمجرد وصولهم إلى المختبر ، تم الاحتفاظ بالأفراد في أحواض مع مياه النهر ودرجة حرارة الغرفة المكيفة: 25 ± 2 والضوء: 12 ساعة / 12 ساعة والتأقلم مع ظروف المختبر لمدة سبعة أيام في ماء منزوع الكلور. يتضمن تحديد بلح البحر جزيئيًا وتسلسل الحمض النووي لبلح البحر رقم انضمام بنك الجينات المقدم من U. tigridis ON872361 و ON872362 و ON872363 و ON872364. تم فحص سمية مبيد كلوربيريفوس لمدة ستة و تسعون ساعة وتأثيرها على U. Tigridis من خلال استخدام التراكيز المختلفة تتراوح ما بين 50, 100, 200, 300 and 400 جزء في المليون. تم تقييم الصفات الفيزيائية والكيميائية لمياه النهر والاحواض بما في ذلك درجة حرارة وإ الأس الهيدروجيني ، والتوصيل الكهربائي ، وإجمالي المواد الصلبة الذائبة ، والأكسجين المذاب ، واالقاعدية، و العسرة ، وأيون الكالسيوم ، وأيون المغنيسيوم. و أظهرت نتائج فحص مياه الأحواض بأنها مناسبة لتربية الكائنات، ثم تم ملاحظة الكائنات الميتة وكانت قيمة التركيز المميت النصفي بعد 96 ساعة  لذات الصدفيتين 157.99 جزء في المليون. وضمن خياشيم الكائن المدروس تم فحص AChE, GST, CAT,  و MDA . و كانت النتيجة‌  بأن تعرض للكلوربيریفوس یۆدی إلی الزيادة في GTS, CAT, MDA ولكن ارتبط ارتفاع مؤشر حيوية للإجهاد التأكسدي عكسياً مع AChE فی الكائن المدروس.  و تم استنتاج بأن تلوث المياه بالكلوربيريفوس يؤدي إلى ظروف غير آمنة للكائنات المائية.

تفاصيل المقالة

كيفية الاقتباس
1.
سمية الكلوربيريفوس على ذوات الصدفتين في المياه العذبة (Unio tigridis) وتأثيراتها على المؤشرات الحيوية. Baghdad Sci.J [انترنت]. 1 يناير، 2024 [وثق 20 مايو، 2024];21(1):0053. موجود في: https://bsj.uobaghdad.edu.iq/index.php/BSJ/article/view/7951
القسم
article

كيفية الاقتباس

1.
سمية الكلوربيريفوس على ذوات الصدفتين في المياه العذبة (Unio tigridis) وتأثيراتها على المؤشرات الحيوية. Baghdad Sci.J [انترنت]. 1 يناير، 2024 [وثق 20 مايو، 2024];21(1):0053. موجود في: https://bsj.uobaghdad.edu.iq/index.php/BSJ/article/view/7951

المراجع

Al-Jaff DK, Jaweir HJ. Aquatic Oligochaeta (Annalida: Clitellata) as Bio Indication for Sediment Quality Assessment in Tigris River Within Baghdad City/Iraq. Baghdad Sci J. 2021 Mar; 18(1): 665-9.‎ https://doi.org/10.21123/bsj.2021.18.1(Suppl.).0665

Shekha YA, Haydar HA, Al-Barzingy YO. The effect of wastewater disposal on the water quality and phytoplankton in Erbil wastewater channel. Baghdad Sci J. 2010 Jan; 7(2): 984-93. https://doi.org/10.21123/bsj.2010.7.2.984-993

El-Gendy KS, Aly NM, Mahmoud FH, Kenawy A, El-Sebae AKH. The role of vitamin C as antioxidant in protection of oxidative stress induced by imidacloprid. Food Chem Toxicol. 2010 Jan; 48(1): 215-21. https://doi.org/10.1016/j.fct.2009.10.003

Solé M, Bonsignore M, Rivera-Ingraham G, Freitas R. Exploring alternative biomarkers of pesticide pollution in clams. Mar Pollut Bull. 2018 Nov; 136: 61-7. https://doi.org/10.1016/j.marpolbul.2018.08.062

Abubakar Y, Tijjani H, Egbuna C, Adetunji CO, Kala S, Kryeziu TL, et al. Pesticides, history, and classification. Natural remedies for pest, disease and weed control: Elsevier; 2020 Jan 1: 29-42. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-819304-4.00003-8

Othman BA, Kakey ES. Environmental pesticide residues and health biomarkers among farmers from greenhouses of Erbil cucumber crops. Iraqi J Agric Sci. 2020 Oct 31;51(5):1357-66. https://doi.org/10.36103/ijas.v51i5.1145

Pandian TJ. Reproduction and development in mollusca. CRC Press; 2018 Sep 7. 320p. https://doi.org/10.1201/b22125

Böhm M, Dewhurst-Richman NI, Seddon M, Ledger SE, Albrecht C, Allen D, et al. The conservation status of the world’s freshwater molluscs. Hydrobiologia. 2021 Jul; 848(12): 3231-54. https://doi.org/10.1007/s10750-020-04385-w

Amiard JC, Caquet T, Lagadic L. Use of biomarkers for environmental quality assessment. 1st ed. CRC Press. London: 2000 Jun 1. 475. p. https://doi.org/10.1201/9781003211020

Gagne F. Biochemical ecotoxicology: principles and methods: Elsevier; 2014 Jul 7. 282p. https://books.google.iq/books?id=ldKcoAEACAAJ

Hao M, Liu R. Molecular mechanism of CAT and SOD activity change under MPA-CdTe quantum dots induced oxidative stress in the mouse primary hepatocytes. Spectrochim Acta A Mol Biomol Spectrosc. 2019 Sep 5; 220: 117104. https://doi.org/10.1016/j.saa.2019.05.009

Brahma N, Gupta A. Acute toxicity of lead in fresh water bivalves Lamellidens jenkinsianus obesa and Parreysia (Parreysia) corrugata with evaluation of sublethal effects on acetylcholinesterase and catalase activity, lipid peroxidation, and behavior. Ecotoxicol Environ Saf. 2020 Feb 1; 189: 109939. https://doi.org/10.1016/j.ecoenv.2019.109939

Potęga A, Kosno M, Mazerska Z. Novel insights into conjugation of antitumor-active unsymmetrical bisacridine C-2028 with glutathione: Characteristics of non-enzymatic and glutathione S-transferase-mediated reactions. J Pharm Anal. 2021 Dec 1;11(6): 791-8. https://doi.org/10.1016/j.jpha.2021.03.014

Rajput VD, Harish, Singh RK, Verma KK, Sharma L, Quiroz-Figueroa FR, et al. Recent Developments in Enzymatic Antioxidant Defence Mechanism in Plants with Special Reference to Abiotic Stress. Biology. 2021 Mar 26; 10(4):267. https://doi.org/10.3390/biology10040267

Bartram J, Balance R, editors. Water quality monitoring: a practical guide to the design and implementation of freshwater quality studies and monitoring programmers. London & New York: CRC Press.1996. 383 p. https://books.google.iq/books?id=d839DwAAQBAJ&lpg

Baird RB, Eaton AD, Clesceri LS, editors. Standard methods for the examination of water and wastewater.23th Edition, 800 I Street, NW, Washington DC, USA: American Public Health Association; 2017. https://www.pdfdrive.com/apha-standard-methodsfor-the-examination-of-water-and-wastewaterd184521100.html.

Ahmed MM. Systematic study on Mollusca from Arabian Gulf and Shatt al-Arab, Iraq. Basrah, Iraq: Center for Arab Gulf Studies, University of Basrah.1975. 78 p.

Plaziat J-C, Younis WR. The modern environments of Molluscs in southern Mesopotamia, Iraq: A guide to paleogeographical reconstructions of Quaternary fluvial, palustrine and marine deposits. Carnets de géologie. 2005 Jan 13(A01): 1-18. https://doi.org/10.4267/2042/1453

Bakr KI, Abdul-Rahman SM, Hamasalih RM. Molecular detection of β-lactamase genes in Klebsiella pneumoniae and Escherichia coli isolated from different clinical sources. Cell Mol Biol. 2021 Dec 1; 67(4): 170-80. https://doi.org/10.14715/cmb/2021.67.4.19

Folmer O, Black M, Hoeh W, Lutz R, Vrijenhoek R. DNA primers for amplification of mitochondrial cytochrome c oxidase subunit I from diverse metazoan invertebrates. Mol Mar Biol Biotechnol. 1994 Oct; 3(5): 294–9.

Hamasalih R, Abdulrahman Z. Antibiofilm potency of ginger (Zingiber officinale) and quercetin against staphylococcus aureus isolated from urinary tract catheterized patients. Appl Ecol Environ Res. 2020 Jan 1; 18(1): 219-36. http://dx.doi.org/10.15666/aeer/1801_219236.

Finney DJ. Probit analysis: a statistical treatment of the sigmoid response curve. Ann Entomol Soc Am. 1952 Dec 1; 45(4): 686. https://doi.org/10.1093/aesa/45.4.686

Alnahdi HS, Ramadan KS, Farid HE, Ayaz NO. Effects of Salvia Miltiorrhiza extract on the regulation of antioxidant enzyme activities in liver and kidney of rats exposed to TCA. Indian J Anim Res. 2018; 52(10): 1422-7. https://doi.org/10.18805/ijar.B-793

Beers RF, Sizer IW. A spectrophotometric method for measuring the breakdown of hydrogen peroxide by catalase. J Biol chem. 1952 Mar; 195(1): 133-40. https://doi.org/10.1016/s0021-9258(19)50881-x

Ohkawa H, Ohishi N, Yagi K. Assay for lipid peroxides in animal tissues by thiobarbituric acid reaction. Anal Biochem. 1979 Jun 1; 95(2): 351-8. https://doi.org/10.1016/0003-2697(79)90738-3

Bespalaya YV, Aksenova OV, Sokolova SE, Shevchenko AR, Tomilova AA, Zubrii NA. Biodiversity and distributions of freshwater mollusks in relation to chemical and physical factors in the thermokarst lakes of the Gydan Peninsula, Russia. Hydrobiologia. 2021 Jul; 848(12): 3031-44. https://doi.org/10.1007/s10750-020-04227-9

Kumar S, Pandey RK, Das S, Das VK. Acute toxicity and behavioral responses of a freshwater mussel, Lamellidens marginalis, exposed to Cypermethrin. J Appl Biosci. 2012 Jun; 38(1): 98-100.

Dallarés S, Carrasco N, Álvarez-Muñoz D, Rambla-Alegre M, Solé M. Multibiomarker biomonitoring approach using three bivalve species in the Ebro Delta (Catalonia, Spain). Environ Sci Pollut Res. 2018 Dec; 25(36): 36745-58. https://doi.org/10.1007/s11356-018-3614-6

Cheng P, Zhou C, Chu R, Chang T, Xu J, Ruan R, et al. Effect of microalgae diet and culture system on the rearing of bivalve mollusks: Nutritional properties and potential cost improvements. Algal Res. 2020 Oct 1; 51: 102076. https://doi.org/10.1016/j.algal.2020.102076

Huang X, Cui H, Duan W. Ecotoxicity of chlorpyrifos to aquatic organisms: A review. Ecotoxicol Environ Saf. 2020 Sep 1; 200: 110731. https://doi.org/10.1016/j.ecoenv.2020.110731

Jiménez K, Solano K, Scholz C, Redondo‐López S, Mena F. Early Toxic Effects in a Central American Native Fish (Parachromis dovii) Exposed to Chlorpyrifos and Difenoconazole. Environ Toxicol Chem. 2021 Jul;40(7):1938-47. https://doi.org/10.1002/etc.5048

Soum T, Ritchie RJ, Navakanitworakul R, Bunthawin S, Dummee V. Acute Toxicity of Chlorpyrifos (CPF) to Juvenile Nile Tilapia (Oreochromis niloticus): Genotoxicity and Histological Studies. J Fish Environ. 2022 Apr 1; 46(1): 130-40.

Bonifacio AF, Zambrano MJ, Hued AC. Integrated ecotoxicological assessment of the complex interactions between chlorpyrifos and glyphosate on a non-target species Cnesterodon decemmaculatus (Jenyns, 1842). Chemosphere. 2020 Dec 1; 261: 127782. https://doi.org/10.1016/j.chemosphere.2020.127782

Ewere EE, Reichelt-Brushett A, Benkendorff K. Imidacloprid and formulated product impacts the fatty acids and enzymatic activities in tissues of Sydney rock oysters, Saccostrea glomerata. Mar Environ Res. 2019 Oct 1; 151: 104765. https://doi.org/10.1016/j.marenvres.2019.104765

Lu X-P, Xu L, Meng L-W, Wang L-L, Niu J, Wang J-J. Divergent molecular evolution in glutathione S-transferase conferring malathion resistance in the oriental fruit fly, Bactrocera dorsalis (Hendel). Chemosphere. 2020 Mar 1; 242: 125203. https://doi.org/10.1016/j.chemosphere.2019.125203

Perić L, Burić P. The effect of copper and chlorpyrifos co-exposure on biomarkers in the marine mussel Mytilus galloprovincialis. Chemosphere. 2019 Jun 1; 225: 126-34. https://doi.org/10.1016/j.chemosphere.2019.03.003

Butrimavičienė L, Stankevičiūtė M, Kalcienė V, Jokšas K, Baršienė J. Genotoxic, cytotoxic, and neurotoxic responses in Anodonta cygnea after complex metal mixture treatment. Environ Sci Pollut Res Int. 2019 Mar; 26(8): 7627-39. DOI: https://doi.org/10.1007/s11356-019-04206-1

Khudhur SM, Shekha YA. Histopathological and Biochemical Biomarker Response of Mussel, Unio Pictorum, to Carbamate Pesticide Carbaryl: A Laboratory Study. Indian J Ani Res. 2019; 1157: 1-5. DOI: https://doi.org/10.18805/ijar. B-1157

Al-Fanharawi AA, Rabee AM, Al-Mamoori AM. Multi-biomarker responses after exposure to organophosphates chlorpyrifos in the freshwater mussels Unio tigridis and snails Viviparous benglensis. Hum Ecol Risk Assess Int J. 2019 Jul 4;25(5):1137-56. https://doi.org/10.1080/10807039.2018.1460800

المؤلفات المشابهة

يمكنك أيضاً إبدأ بحثاً متقدماً عن المشابهات لهذا المؤلَّف.