المقاومة للمضادات الحياتية والخصائص الجزيئية لبكتريا كوكوريا الممرضة البازغة حديثا  والمعزولة من العراق ومصر

المؤلفون

  • ميسم بلاسم الخميسي قسم علوم الحياة، كلية العلوم للبنات، جامعة بغداد، بغداد، العراق. https://orcid.org/0000-0003-1467-4607
  • محمد خالد ابراهيم قسم المايكروبيولوجي ، كلية العلوم، جامعة عين شمس، القاهرة، مصر.
  • ايناس حامد الشطوري قسم المايكروبيولوجي ، كلية العلوم، جامعة عين شمس، القاهرة، مصر.
  • ايمان محمد امين الخولي مستشفى عين شمس التخصصي، جامغة عين شمس، القاهرة، مصر.
  • اسلام السيد مكاوي مستشفى عين شمس التخصصي، جامغة عين شمس، القاهرة، مصر.
  • سحر طلبه محمد طلبه قسم المايكروبيولوجي ، كلية العلوم، جامعة عين شمس، القاهرة، مصر.

DOI:

https://doi.org/10.21123/bsj.2024.11601

الكلمات المفتاحية:

حساسية المضادات، تكوين الأغشية الحية، كوكوريا، الجينات المقاومة للمايكروليدات، البكتريا المتعددة المقاومة .

الملخص

تم جمع المعزولات البكتيريةمن عينات سريرية مختلفة من مختبرات مدينة الطب التعليمية في بغداد ومستشفى عين شمس التخصصي في القاهرة. وقد تم تعريف هذه المعزولات بواسطةنظام VITEK2 الآلي المدمج. كما تم فحص الحساسية للمضادات الحيوية، وتكوين الأغشية الحيوية، والتقصي عن جينات مقاومة الماكروليدات ermA، وermB، وermC، وmsrA & mef، وintegron intI1، وintI2. حيثتم جمع 60 عزلة من البلدين (42عزلة من العراق، و18 عزلة من مصر). تم تشخيص العزلات البكتيرية من خلال صفاتها المورفولوجية والكيميائية الحيوية. كانت العزلات حساسة للبيبراسيللين/تازوباكتام والفانكومايسين، ومقاومة للإريثرومايسين والأزيثروميسين والأوفلوكساسين. وقد تباينت قدرة بكتريا الكوكورياعلى تكوين الأغشية الحيوية، حيث كانت Kocuria kristinae منتجة قوية للأغشية الحيوية، بينما تراوحت Kocuria rhizophila بين غيرمنتجة في عزلات العراق ومنتجة ضعيفة في عزلات مصر، وأظهرالكشف عن جينات مقاومة الماكروليدات أن جين mef كان موجودا في العزلات من العراق بنسبة 7.14% فقط بينما وجد جين ermA في العزلات من مصر بنسبة 6.66% فقط، كما ثبت بالكشفعن integron أن intI1 كان موجودا في العزلات من العراق ومصر بينما تم اكتشاف intI2 في العزلات من العراق فقط. على حد علمنا، هذه هي أول دراسة مقارنة أجريت للتحقيق في وجود Kocuria spp.. في العراق ومصر. تسلط الدراسة الضوء على أهمية Kocuria spp.. والتي تعتبر من مسببات الأمراض الانتهازية، حيث أنها مسؤولة عن حالات العدوى البشرية المختلفة.

السيرة الشخصية للمؤلف

سحر طلبه محمد طلبه، قسم المايكروبيولوجي ، كلية العلوم، جامعة عين شمس، القاهرة، مصر.

 

 

المراجع

Reddy GSN, Prakash JSS, Prabahar V, Matsumoto GI,Stackebrandt E, Shivaji S. Kocuria Polaris sp. nov. , An Orange-pigmented Psychrophilic Bacterium Isolated from an Antarctic Cyanobacterial Mate Sample. Int J Syst Evol Microbiol. 2003; 53: 183-187. https://doi.org/10.1099/ijs.0.02336-0

Bala R, Kaur N, Gupta N, Narang U. Kocuria rosea Bacteremia in Chronic Kidney Disease Patient: A Rare Case Report. J Pure Appl Microbiol. 2021; 15: 1136–1138. https://doi.org/10.22207/JPAM.15.3.40

Alles M, Wariyapola D, Salvin K, Jayatilleke K. Endophthalmitis Caused by Kocuria kristinae: A Case Report. Sri Lankan J Infect Dis. 2020; 10: 146. https://doi.org/10.1159/000521318

Napolitani M, Troiano G, Bedogni C, Messina G, Nante N. Kocuria kristinae: an emerging pathogen in medical practice. J Med Microbiol. 2019; 68(11): 1596-1603. https://doi.org/10.1099/jmm.0.001023

Ramos GLPA, Vigoder HC, Nascimento JDS. Kocuria spp. in Foods: Biotechnological Uses and Risks for Food Safety. Appl Food Biotech. 2021; 8 (2): 79-88. https://doi.org/10.22037/afb.v8i2.30748

Franz CM, den Besten HM, Boehnlein C, Gareis M, Zwietering MH, Fusco V. Reprint of: Microbial food safety in the 21st century: Emerging challenges and foodborne pathogenic bacteria. Trends Food Sci Technol. 2019; 84: 34-37. https://doi.org/10.1016/j.tifs.2019.01.009

Boruah P, Sarmah P, Das PK, Goswami, T. Exploring the lignolytic potential of a new laccase producing strain Kocuria sp. PBS-1 and its application in bamboo pulp bleaching. Int Biodeter Biodegr. 2019; 143: 104726. https://doi.org/10.1016/j.ibiod.2019.104726

Fancello F, Multineddu C, Santona M, Deiana P, Zara G, Mannazzu I. et al . Bacterial biodiversity of extra virgin olive oils and their potential biotechnological exploitation. Microorganisms. 2020; 8 (1): 97. https://doi.org/10.3390/microorganisms8010097

Li J, Zhang S. Kocuria coralli sp. nov., a novel actinobacterium isolated from coral reef seawater. Int J Syst Evol Microbiol 2020; 70: 785–789. https://doi.org/10.1099/ijsem.0.003825

Grama A, Sîrbe C, Fufezan O, Pop TL. Kocuria varians Meningitis in a Child with Chronic Granulomatous Disease. Turk Arch Pediatr. 2021; 56: 278–279. http://doi.org/10.5152/TurkArchPediatr.2021.20228

Funke G, Funke-Kissling P. Performance of the new Vitek 2 GP card for identification of medically relevant gram-positive cocci in a routine clinical laboratory. J Clin Microbiol. 2005; 43: 84-88. https://doi.org/10.1128/jcm.43.1.84-88.2005

Almagro-Molto M, Suerbaum S, Schubert S. Ulcerative keratitis due to Kocuria palustris: An emerging pathogen. Enferm Infecc Microbiol Clin. 2019; 37(6): 422-423. http://doi.org/10.1016/j.eimc.2018.10.016

Savini V, Catavitello C, Masciarelli G, Astolfi D, Balbinot A, Bianco A, et al. Drug sensitivity and clinical impact of members of the genus Kocuria. J Med Microbiol. 2010; 59: 1395–1402. https://doi.org/10.1099/jmm.0.021709-0.

Gun MA, Cayci YT, Durupinar B, Coban AY. A New Colorimetric Method for Rapid Detection of Antibiotic Resistance in Escherichia coli Isolates. Jundishapur J Microbiol. 2021; 14(11): 1-8. https://doi.org/10.5812/jjm.119858

Freeman DJ, Falkiner FR, Keane CT. New method for detecting slime production by coagulase negative staphylococci. J Clin Pathol. 1989; 42(8): 872–874. http://dx.doi.org/10.1136/jcp.42.8.872.

Zmantar T, Kouidhi B, Miladi H, Bakhrouf A. Detection of macrolide and disinfectant resistance genes in clinical Staphylococcus aureus and coagulase-negative staphylococci. BMC Research Notes. 2011; 4:453: 1-9. http://doi.org/10.1186/1756-0500-4-453

Luo Y, Mao D, Rysz M, Zhou Q, Zhang H, Xu L, et al. Trends in antibiotic resistance genes occurrence in the Haihe River, China. Environ Sci Technol. 2010; 44(19):7220–7225. http://doi.org/10.1021/es100233w

Chen J, Liu YS, Su HC, Ying GG, Liu F, Liu SS, et al. Removal of antibiotics and antibiotic resistance genes in rural wastewater by an integrated constructed wetland. Environ Sci Pollut Res Int. 2015; 22: 1794–1803. http://doi.org/10.1007/s11356-014-2800-4.

SAS Statistical Analysis System, User's Guide. Statistical. Version 9.6th ed. SAS. Inst Inc. 2018; Cary N.C. USA.

Pierron A, Zayet S, Toko L, Royer PY, Garnier P, Gendrin V. Catheter-related bacteremia with endocarditis caused by Kocuria rhizophila. Infect Dis Now. 2021; 51:97–98. https://doi.org/10.1016/j.medmal.2020.09.007.

Amadeo-Oreggioni GP, Ortiz-Ramirez GY, Baquero-Ospina P, Salcedo-Villanueva G, Fromow-Guerra J J, Velez-Montoya R. Kocuria Endophthalmitis: clinical Spectrum and long-term outcomes. Ocul Immunol Inflamm. 2022; 30: 1768–1774. https://doi.org/10.1080/09273948.2021.1951304.

Ayyed D, Al-Mathkhury HJF. Kocuria kristinae is an emerging causative agents of recurrent urinary tract infections in Iraqi women. Plant Archives. 2020; (2): 8950-8952.

Taher NM. Kocuria Species: Important Emerging Pathogens in Pediatric Patients. J Pure Appl Microbiol. 2022; 16(4): 2874-2879. https://doi.org/10.22207/JPAM.16.4.60.

Shabeeb DB, Naji EN. Prevalence of parallel infection of dental caries and tonsillitis among some Iraqi children. Bionatura. 2023; 8(1): 1-11. https://doi.org/10.21931/rb/css/2023.08.01.84

Hassan RM, Bassiouny DM, Matar Y. Bacteremia caused by Kocuria kristinae from Egypt: Are there more? A Case Report and Review of the Litrature. Case Reports in Infectious Diseases. Hindawi Puplishing Corporation. 2016; 1-4. https://doi.org/10.1155/2016/6318064.

Maany D A, El-Waseif A A, Abdelall MFM. Elusive function of dental plaque polysaccharide produced from Kocuria rosea and its molecular signature. Egypt Pharm J. 2020; 18(1): 60–67.http://doi. 10.4103/epj.epj_40_18.

López GD, Álvarez-Rivera G, Carazzone C, Ibáñez E, Leidy C.Carotenoids in Bacteria: Biosynthesis, Extraction,Characterization and Applications. Int J Mol Sci. 2021; 1-36. https://doi.org/10.1080/10408347.2021.2016366.

Toth AG, Csabai I, Kriko E, Tozser D, Maroti G, Patai AV, et al. Raw milk for human consumption may carry antimicrobial resistance genes. Biorxiv. 2019; 2-7. https://doi.org/10.1101/853333.

Chakraborty B, Banerjee D. Combating Kocuria: A game of shadows. Int J Sci Res. 2019; 8 (12 ): 1-3. http://doi.org/10.36106/ijsr.

Fowora MA, Omolopo IA, Aiyedogbon A, Abioye A, Oladele OE, Tajudeen AO, et al. Multidrug-Resistant Kocuria rosea and Methicillin- Resistant Staphylococcus aureus Co-Infection in a Nigerian Patient with COVID-19: A Case Report. Am J Case Rep. 2023; 24: 1-7. http://doi.org/10.12659/AJCR.938761.

Clinical and Laboratory Standards Institute. Clinical and Laboratory Standards Institute (CLSI). Performance standards for antimicrobial susceptibility test¬ing. 2020; 30th ed. CLSI Suppl M100. https://clsi.org/media/3481/m100ed30_sample.pdf.

Guyomard AP, Soumet C, Leclercq R, Populairf FD, Sanders P. Antibiotic Susceptibility of Bacteria Isolated from Pasteurized Milk and Characterization of Macrolide-Lincosamide-Streptogramin Resistance Genes. J Food Prot. 2005; 68 ( 2): 347–3. https://doi.org/10.4315/0362-028X-68.2.347.

Lu W, Qiu Q, Chen K, Zhao R, Li Q, Wu, Q. Distribution and Molecular Characterization of Functional Class 2 Integrons in Clinical Proteus mirabilis Isolates. Infect Drug Resist. 2022; 15: 465-474. https://doi.org/10.2147/IDR.S347119.

Ali SA, Al-Haideri HH, Al Hashimi AM. Evaluating the Activity of Ultrasound on Biofilm Formation by Acinetobacter baumannii isolated from clinical Specimens. Baghdad Sci J. 2022; 19(6): 1522-1535. https://dx.doi.org/10.21123/bsj.2022.7739.

التنزيلات

إصدار

القسم

article

كيفية الاقتباس

1.
المقاومة للمضادات الحياتية والخصائص الجزيئية لبكتريا كوكوريا الممرضة البازغة حديثا  والمعزولة من العراق ومصر. Baghdad Sci.J [انترنت]. [وثق 23 ديسمبر، 2024];22(7). موجود في: https://bsj.uobaghdad.edu.iq/index.php/BSJ/article/view/11601