تقييم نشاط Amygdalin ( (B17 وبذور اليقطين Cucurbita pepo ضد المتبرعمة الكيسية من مرضى المصابين بالإسهال في بغداد ، العراق: دراسة في المختبر

محتوى المقالة الرئيسي

Saba S. Salman
Naksheen M. Ardalan

الملخص

تعد المتبرعمة الكيسية من الطفيليات الواسعة الانتشار في الجهاز الهظمي البشري والحيواني.يعتبر الميترونيدازول الدواء الاساسي لعلاج عدوى المتبرعمة الكيسية .ومع ذلك , كان هناك دليل متزايد على فشل العلاج والاثار الجانبية الخطرة وحدوث سلالات مقاومة للميترونيدازول.شاركت العديد من الدراسات في الفترة الاخيرة في البحث عن علاجات بديلة لعدوى المتبرعمة الكيسية , وخاصة دراسة العلاجات الطبية.تم توليد قدر كبير من الاهتمام حول دور أميغدالين B17 وبذور اليقطين في القضاء على الالتهابات الطفيلية. قٌدمت هذه الدراسة للتحقق في فعالية أثنين من المركبات الطبيعية في المختبر أمغدالين B17 وبذور اليقطين ضد المتبرعمة الكيسية المعزولة من مرضى يعانون من أعراض مرضية , في الحضانة المختبرية للطفيلي تم حساب  B17 (200, 400 ميكروغرام/لتر), بذور اليقطين (200, 400 ميكروغرام/لتر) و الميترونيدازول (100, 150 ميكروغرام/لتر) في فترات زمنية مختلفة (ساعة ،ساعتان،اربع وعشرون ساعة ،ثمان واربعون ساعة).تم تقيم التغيرات المورفولوجية بأستخدام المجهر الضوئي.كانت المتبرعمة الكيسية المعزولة من المرضى الذين يعانون من أعراض مرضية من النمط الجيني الاول وظهر التأثير النوعي للأمغدالين B17و بذور اليقطين عند p<0.05 في تثبيط نموالمتبرعمة الكيسية مختبرياً.أظهرت هذه النتائج الاثارالعلاجية المحتملة للأمغدالين B17 وبذوراليقطين ضد داء المتبرعمة الكيسية كبدائل طبيعية , أمنة وفعّالة.

تفاصيل المقالة

كيفية الاقتباس
1.
تقييم نشاط Amygdalin ( (B17 وبذور اليقطين Cucurbita pepo ضد المتبرعمة الكيسية من مرضى المصابين بالإسهال في بغداد ، العراق: دراسة في المختبر. Baghdad Sci.J [انترنت]. 1 فبراير، 2022 [وثق 22 مايو، 2024];19(1):0016. موجود في: https://bsj.uobaghdad.edu.iq/index.php/BSJ/article/view/4893
القسم
article

كيفية الاقتباس

1.
تقييم نشاط Amygdalin ( (B17 وبذور اليقطين Cucurbita pepo ضد المتبرعمة الكيسية من مرضى المصابين بالإسهال في بغداد ، العراق: دراسة في المختبر. Baghdad Sci.J [انترنت]. 1 فبراير، 2022 [وثق 22 مايو، 2024];19(1):0016. موجود في: https://bsj.uobaghdad.edu.iq/index.php/BSJ/article/view/4893

المراجع

Sulekova LF, Gabrielli S, Furze F, Milardi GL, Bilotti E, De Angelis M, et al. Molecular characterization of Blastocystis subtypes in HIV-positive patients and evaluation of risk factors for colonization. BMC Infect Dis. 2019;19(1):1–7.

Alfellani MA, Stensvold CR, Vidal-Lapiedra A, Onuoha ES, Fagbenro-Beyioku AF, Clark CG. Variable geographic distribution of Blastocystis subtypes and its potential implications. Acta Trop. 2013;126(1):11–8.

Lepczyńska M, Chen W, Dzika E. Mysterious chronic urticaria caused by Blastocystis spp.? Int J Dermatol. 2016;55(3):259–66.

As farm S, Daryani A, Sarvi S, Pagheh AS, Hosseini SA, Saberi R, et al. Geospatial analysis and epidemiological aspects of human infections with Blastocystis hominis in Mazandaran Province, northern Iran. Epidemiol Health. 2019;41.

Stensvold CR, Nielsen H V, Mølbak K, Smith H V. Pursuing the clinical significance of Blastocystis–diagnostic limitations. Trends Parasitol. 2009;25(1):23–9.

Khademvatan S, Masjedizadeh R, Rahim F, Mahbodfar H, Salehi R, Yousefi-Razin E, et al. Blastocystis and irritable bowel syndrome: Frequency and subtypes from Iranian patients. Parasitol Int. 2017;66(2):142–5.

Ramírez JD, Sánchez A, Hernández C, Flórez C, Bernal MC, Giraldo JC, et al. Geographic distribution of human Blastocystis subtypes in South America. Infect Genet Evol. 2016;41:32–5.

Ismail S, Ali I, Fahmy Z, Azmy M, Magdy M. Susceptibility of Blastocystis hominis to monolaurin (lauric acid), lactoferrin (Lactobacillus acidophilus) and metronidazole: an in vitro and in vivo studies. Afr J Pharm Pharmacol. 2016;10(21):14–25.

Mirza H, Teo JDW, Upcroft J, Tan KSW. A rapid, high-throughput viability assay for Blastocystis spp. reveals metronidazole resistance and extensive subtype-dependent variations in drug susceptibilities. Antimicrob Agents Chemother. 2011;55(2):637–48.

El-Sayed SH, Amer N, Ismail S, Ali I, Rizk E, Magdy M, et al. In vitro and in vivo anti-Blastocystis efficacy of olive leaf extract and bee pollen compound. Res J Parasitol. 2017;12:33–44.

Mirmiranpour H, Khaghani S, Zandieh A, Khalilzadeh OO, Gerayesh-Nejad S, Morteza A, et al. Amygdalin inhibits angiogenesis in the cultured endothelial cells of diabetic rats. Indian J Pathol Microbiol. 2012;55(2):211.

Chang H-K, Shin M-S, Yang H-Y, Lee J-W, Kim Y-S, Lee M-H, et al. Amygdalin induces apoptosis through regulation of Bax and Bcl-2 expressions in human DU145 and LNCaP prostate cancer cells. Biol Pharm Bull. 2006;29(8):1597–602.

Qadir M, Fatima K. Review on the pharmacological activity of amygdalin. Arch Can Res. 2017;5(4):160.

Liu C, Li X, Yang H, Mao X, Wang J, Gao W. Effect of natural β‐glucosidase inhibitors in reducing the toxicity of amygdalin in persicae semen. Phytother Res. 2017;31(5):771–7.

Yadav M, Jain S, Tomar R, Prasad G, Yadav H. Medicinal and biological potential of pumpkin: an updated review. Nutr Res Rev. 2010;23(2):184–90.

Lens C, Turner N, Khan T, Brauer G. Ethnoveterinary medicines used to treat endoparasites and stomach problems in pigs and pets in British Columbia, Canada. Vet Parasitol. 2007;148(3–4):325–40.

Leelayoova S, Taamasri P, Rangsin R, Naaglor T, Thathaisong U, Mungthin M. In-vitro cultivation: a sensitive method for detecting Blastocystis hominis. Ann Trop Med Parasitol. 2002;96(8):803–7.

Mahmood MN, Ramadan FN, Hassan MS, Sabry HY, Magdy MM. Introducing Miltefosine as an anti-cryptosporidial agent in immunocompromised mice. J Plant Pathol Microbiol. 2016;7(354):2.

Padukone S, Mandal J, Rajkumari N, Bhat BV, Swaminathan RP, Parija SC. Detection of Blastocystis in clinical stool specimens using three different methods and morphological examination in Jones’ medium. Trop Parasitol. 2018;8(1):33.

Stensvold CR. Comparison of sequencing (barcode region) and sequence-tagged-site PCR for Blastocystis subtyping. J Clin Microbiol. 2013;51(1):190–4.

Sawangjaroen N, Sawangjaroen K. The effects of extracts from anti-diarrheic Thai medicinal plants on the in vitro growth of the intestinal protozoa parasite: Blastocystis hominins. J Ethnopharmacol. 2005;98(1–2):67–72.

Stenzel DJ, Boreham PF. Blastocystis hominis revisited. Clin Microbiol Rev. 1996;9(4):563–84.

Kurt Ö, Al FD, Tanyüksel M. Eradication of Blastocystis in humans: Necessary for all? Parasitol Int. 2016;65(6):797–801.

Rajamanikam A, Hooi HS, Kudva M, Saudi C, Kumar S. Resistance towards metronidazole in Blastocystis sp.: A pathogenic consequence. PLoS One. 2019;14(2).

Naß J, Efferth T. The activity of Artemisia spp. and their constituents against Trypanosomiasis. Phytomedicine. 2018;47:184–91.

Organization WH. The promotion and development of traditional medicine: report of a WHO meeting [held in Geneva from 28 November to 2 December 1977]. World Health Organization; 1978.

Al-Ani AAJ, S Albakri H. Molecular characterization of Blastocystis sp. isolates from human, cattle, and sheep by restriction fragment length polymorphism (RFLP) analysis of the small subunit ribosomal RNA gene. Iraqi J Vet Sci. 2016;30(1):1–7.

Nghaimesh SK, Mohammad NS, Kader MA. Gene sequencing of Blastocystis hominis and its association with H. pylori in the development of irritable bowel syndrome. kirkuk university journal for scientific studies. 2018;13(1):289-303.

Cakir F, Cicek M, Yildirim IH. Determination the subtypes of Blastocystis sp. and evaluate the effect of these subtypes on pathogenicity. Acta Parasitol. 2019;64(1):7–12.

Jiménez PA, Jaimes JE, Ramírez JD. A summary of Blastocystis subtypes in North and South America. Parasit Vectors. 2019;12(1):376.

Holzbecher MD, Moss MA, Ellenberger HA. The cyanide content of laetrile preparations, apricot, peach, and apple seeds. J Toxicol Clin Toxicol. 1984;22(4):341–7.

Mani J, Neuschäfer J, Resch C, Rutz J, Maxeiner S, Roos F, et al. Amygdalin modulates prostate cancer cell adhesion and migration in vitro. Nutr Cancer. 2019;1–10.

Yang Y, Zhao J, Song X, Li L, Li F, Shang J, et al. Amygdalin reduces lipopolysaccharide-induced chronic liver injury in rats by downregulating PI3K/AKT, JAK2/STAT3, and NF-κB signaling pathways. Artif cells, nanomedicine, Biotechnol. 2019;47(1):2688–97.

Song Z, Xu X. Advanced research on anti-tumor effects of amygdalin. J Cancer Res Ther. 2014;10(5):3.

Kim MY, Kim EJ, Kim Y-N, Choi C, Lee B-H. Comparison of the chemical compositions and nutritive values of various pumpkin (Cucurbitaceae) species and parts. Nutr Res Pract. 2012;6(1):21–7.

Hammer KA, Carson CF, Riley T V. Antimicrobial activity of essential oils and other plant extracts. J Appl Microbiol. 1999;86(6):985–90.

Adebayo JO, Adewole KE, Krettli AU. Cysteine-stabilized peptide extract of Morinda Lucida (Benth) leaf exhibits antimalarial activity and augments the antioxidant defense system in P. berghei-infected mice. J Ethnopharmacol. 2017;207:118–28.

Amorim CZ, Marques AD, Cordeiro RSB. Screening of the antimalarial activity of plants of the Cucurbitaceae family. Mem Inst Oswaldo Cruz. 1991;86:177–80.

Mullai K, Jebanesan A. Larvicidal, ovicidal, and repellent activities of the leaf extract of two cucurbitacious plants against filarial vector Culex quinquefasciatus (Say)(Diptera: Culicidae). Trop Biomed. 2007;24(1):1–6.

Marie-Magdeleine C, Hoste H, Mahieu M, Varo H, Archimede H. In vitro effects of Cucurbita moschata seed extracts on Haemonchus contortus. Vet Parasitol. 2009;161(1–2):99–105.

Aziz ARA, AbouLaila MR, Aziz M, Omar MA, Sultan K. In vitro and in vivo anthelmintic activity of pumpkin seeds and pomegranate peels extracts against Ascaridia galli. Beni-Suef Univ J Basic Appl Sci. 2018;7(2):231–4.

Kinyua CM. Modeling and Application of Response Surface Methodology for Optimization of Weight Gain of Eight Weeks Old Kenbro Served With Pumpkin (Cucurbita Pepo L) Seeds Extract. Chuka University; 2019.

Mokhtar AB, El-Gaydar EK, Habib AS. In vitro anti-protozoal activity of propolis extract and cysteine proteases inhibitor (phenyl vinyl sulfone) on Blastocystis species. J Egypt Soc Parasitol. 2016;240(3825):1–12.

Yakoob J, Abbas Z, Beg MA, Naz S, Awan S, Hamid S, et al. In vitro sensitivity of Blastocystis hominis to garlic, ginger, white cumin, and black pepper used in the diet. Parasitol Res. 2011;109(2):379–85.

Roberts T, Bush S, Ellis J, Harkness J, Stark D. In vitro antimicrobial susceptibility patterns of Blastocystis. Antimicrob Agents Chemother. 2015;59(8):4417–23.

المؤلفات المشابهة

يمكنك أيضاً إبدأ بحثاً متقدماً عن المشابهات لهذا المؤلَّف.