تأثير نمذجة التستوستيرون إينونثات للمبيض متعدد التكيسات على تعبير الكبد Irs-2 mRNA في الفئران: تقرير موجز
الشريط الجانبي للمقالة
محتوى المقالة الرئيسي
الملخص
هناك العديد من النماذج الحيوانية لتكيس المبايض (PCO). يعد استخدام إينونثات التستوستيرون الخارجي إحدى طرق تحريض هذه النماذج. ومع ذلك ، يجب أيضًا دراسة تحريض مقاومة الأنسولين في تقنيات النماذج. لذلك ، تهدف الدراسة الحالية إلى التحقق من تعبير ركيزة مستقبلات الأنسولين (Irs) -2 mRNA في أنسجة الكبد لنموذج PCO الفئران. تم تقسيم تسعة عشر من قئران ويستار إلى ثلاث مجموعات. (1) تلقت مجموعة نمذجة PCO (N = 7) يوميًا 1.0 مجم / 100 جرام من إينونثات التستوستيرون المذاب في زيت الزيتون جنبًا إلى جنب مع الوصول الحر الى ماء الدكستروز ذي التركيز 5 ٪ ، (2) مجموعة المركبات (N = 6) ، والتي تم التعامل معها مثل مجموعة PCO ، لكنهم لم يتلقوا إينونثات التستوستيرون، (3) مجموعة التحكم (N = 6) مع الرعاية المنتظمة. تم حقن جميع الحيوانات داخل الصفاق لمدة 14 يومًا. تمت دراسة التعبير عن Irs-2 mRNA باستخدام PCR في الوقت الفعلي وتم الإبلاغ عن تغييرات الطي (FC). تم اعتبار متوسط التعبير في المجموعة الضابطة بمثابة المعيار. تم العثور على حوالي 13.4 ٪ تقليل التعبير في مجموعة PCO (FC = 0.874 ، قيمة P = 0.043). لم يتم العثور على انخفاض كبير في مجموعة المركبات (FC = 0.951 ، قيمة P = 0.076). ومع ذلك ، لم يُظهر تحليل التباين فرقًا معنويًا بين جميع مجموعات الدراسة (قيمة P = 0.085). قد يؤدي النموذج الحالي لـ PCO إلى مقاومة الأنسولين على مستوى الكبد بحجم تأثير منخفض عن طريق تقليل تعبير mRNA عن Irs-2. يُقترح دراسة الجينات والجزيئات المعنية في الأنسجة الأخرى لنماذج حيوانية PCO.
تفاصيل المقالة
هذا العمل مرخص بموجب Creative Commons Attribution 4.0 International License.
كيفية الاقتباس
المراجع
Xing L-J, Zhang L, Liu T, Hua Y-Q, Zheng P-Y, Ji G. Berberine reducing insulin resistance by up-regulating IRS-2 mRNA expression in nonalcoholic fatty liver disease (NAFLD) rat liver. Eur J Pharmacol. 2011;668(3):467-71.
Previs SF, Withers DJ, Ren J-M, White MF, Shulman GI. Contrasting effects of IRS-1 versus IRS-2 gene disruption on carbohydrate and lipid metabolism in vivo. Journal of Biological Chemistry. 2000;275(50):38990-4.
Kiani F, Sayehmiri F, Hasanpour Dehkordi A, Motedayen M. Surveying the relationship between Gly1057Asp polymorphism of IRS-2 gene and susceptibility to type 2 diabetes; a systematic review and meta-analysis study. J Renal Inj Prev. 2019;8(4):263-70.
Keshavarz M, Moradi S, Emami Z, Rohani F. Association between serum 25 (OH) vitamin D and metabolic disturbances in polycystic ovary syndrome. Neth J Med. 2017;5:191-6.
Delitala AP, Capobianco G, Delitala G, Cherchi PL, Dessole S. Polycystic ovary syndrome, adipose tissue and metabolic syndrome. Arch. Gynecol. Obstet. 2017;296(3):405-19.
Glintborg D, Andersen M. MANAGEMENT OF ENDOCRINE DISEASE: Morbidity in polycystic ovary syndrome. Eur J Endocrinol. 2017;176(2):R53-R65.
Pasquali R. Metabolic syndrome in polycystic ovary syndrome. Metabolic Syndrome Consequent to Endocrine Disorders. 49: Karger Publishers; 2018. p. 114-30.
Darabi S, Hasanvand A. Protective effect of metformin on diabetes mellitus, diabetic kidney disease and hepatocytes. Annals of Research in Antioxidants. 2018;3(1):e03.
Sadeghi H, Jahanbazi F, Sadeghi H, Omidifar N, Alipoor B, Kokhdan EP, et al. Metformin attenuates oxidative stress and liver damage after bile duct ligation in rats. Res Pharm Sci. 2019;14(2):122.
Ainehchi N, Farshbaf-Khalili A, Ghasemzadeh A, Hamdi K, Khaki A, Ouladsahebmadarek E, et al. The Effect of Herbal Medicine Supplementation on Clinical and Para-clinical Outcomes in Women With PCOS: A Systematic Review and Meta-analysis. Int J Wom Health Reprod Sci. 2017;7(4):423-33.
Khan AA, Begum W. Efficacy of Darchini in the management of polycystic ovarian syndrome: A randomized clinical study. Journal of Herbal Medicine. 2019;15:100249.
Arentz S, Smith CA, Abbott J, Fahey P, Cheema BS, Bensoussan A. Combined lifestyle and herbal medicine in overweight women with polycystic ovary syndrome (PCOS): A randomized controlled trial. Phytother Res. 2017;31(9):1330-40.
Wiweko B, Susanto CA. The effect of metformin and cinnamon on serum anti-mullerian hormone in women having PCOS: A Double-blind, randomized, controlled trial. JHRS. 2017;10(1):31.
Corbett S, Morin-Papunen L. The polycystic ovary syndrome and recent human evolution. Mol Cell Endocrinol. 2013;373(1-2):39-50.
Speca S, Napolitano C, Tagliaferri G. The pathogenetic enigma of polycystic ovary syndrome. J Ultrasound. 2007;10(4):153-60.
Lujan ME, Chizen DR, Pierson RA. Diagnostic criteria for polycystic ovary syndrome: pitfalls and controversies. J Obstet Gynaecol Can. 2008;30(8):671-9.
Osuka S, Nakanishi N, Murase T, Nakamura T, Goto M, Iwase A, et al. Animal models of polycystic ovary syndrome: A review of hormone‐induced rodent models focused on hypothalamus‐pituitary‐ovary axis and neuropeptides. Mol Cell Endocrinol. 2019;18(2):151-60.
Noroozzadeh M, Behboudi-Gandevani S, Zadeh-Vakili A, Tehrani FR. Hormone-induced rat model of polycystic ovary syndrome: A systematic review. Life sciences. 2017;191:259-72.
Oakley O, Lin P-C, Bridges P, Ko C. Animal models for the study of polycystic ovarian syndrome. Endocrinology and Metabolism. 2011;26(3):193-202.
Ahmadi M, Rostamzadeh A, Fathi F, Mohammadi M, Rezaie MJ. The effect of Melatonin on histological changes of ovary in induced polycystic ovary syndrome model in mice. Middle East Fertil Soc J . 2017 Dec 1;22(4):255-9..
Kalhori Z, Azadbakht M, Bazdar A, Zeinali H. Polycystic ovary induction in Mouse by testosterone enanthate. Journal of Fasa University of Medical Sciences. 2014;3(4):387-91.
Noori F, Azadbakht M, Parto P, Bazaz Z. The Effect of Repaglinide on Polycystic Ovary Induced by Testosterone Enanthate in NMRI Mice. Journal of Fasa University of Medical Sciences. 2017;6(4):446-73.
Ghowsi M, Yousofvand N, Moradi S. Effects of Salvia officinalis L.(common sage) leaves tea on insulin resistance, lipid profile, and oxidative stress in rats with polycystic ovary: An experimental study. Avicenna J Phytomed. 2020;10(3):263-72.
Jeckel KM, Bouma GJ, Hess AM, Petrilli EB, Frye MA. Dietary fatty acids alter left ventricular myocardial gene expression in Wistar rats. Nutrition research. 2014;34(8):694-706.
Gyte A, Pritchard L, Jones H, Brennand J, White A. Reduced Expression of the KATP Channel Subunit, Kir6. 2, is Associated with Decreased Expression of Neuropeptide Y and Agouti‐Related Protein in the Hypothalami of Zucker Diabetic Fatty Rats. Journal of neuroendocrinology. 2007;19(12):941-51.
Demissie M, Lazic M, Foecking EM, Aird F, Dunaif A, Levine JE. Transient prenatal androgen exposure produces metabolic syndrome in adult female rats. Am J Physiol Endocrinol Metab. 2008;295(2):E262-E8.
Zhang J, Ou J, Bashmakov Y, Horton JD, Brown MS, Goldstein JL. Insulin inhibits transcription of IRS-2 gene in rat liver through an insulin response element (IRE) that resembles IREs of other insulin-repressed genes. Proceedings of the National Academy of Sciences. 2001;98(7):3756-61.
Dominici F, Hauck S, Argentino D, Bartke A, Turyn D. Increased insulin sensitivity and upregulation of insulin receptor, insulin receptor substrate (IRS)-1 and IRS-2 in liver of Ames dwarf mice. Journal of Endocrinology. 2002;173(1):81-94.
Yen H, Jakimiuk A, Munir I, Magoffin D. Selective alterations in insulin receptor substrates-1,-2 and-4 in theca but not granulosa cells from polycystic ovaries. MHR: Basic science of reproductive medicine. 2004;10(7):473-9.
Baranova A, Tran T, Birerdinc A, Younossi Z. Systematic review: association of polycystic ovary syndrome with metabolic syndrome and non‐alcoholic fatty liver disease. Aliment Pharmacol Ther. 2011;33(7):801-14.
Burks DJ, de Mora JF, Schubert M, Withers DJ, Myers MG, Towery HH, et al. IRS-2 pathways integrate female reproduction and energy homeostasis. Nature. 2000;407(6802):377.