تأثير إدارة البيراسيتام على الوقاية من الشلل الدماغي في أجنة الفئران المولودة للفئران الحوامل عن طريق تحديد مستويات Bdnf في أنسجة المخ
DOI:
https://doi.org/10.21123/bsj.2024.9588الكلمات المفتاحية:
BDNF، الشلل الدماغي، GluN3A، بيراسيتام، الفئران.الملخص
الشلل الدماغي هو السبب الأكثر شيوعًا للإعاقة لدى الأطفال في جميع أنحاء العالم، ويقدر معدل انتشاره بـ 1.5-4 لكل 1000 طفل؛ ارتفاع معدل الانتشار بين السكان ذوي الموارد المنخفضة (ما يصل إلى 10 لكل 1000 طفل). عامل التغذية العصبية المشتق من الدماغ (BDNF) هو مُعدِّل قوي للعديد من الوظائف العصبية التي تحمي الوليد أو الدماغ النامي من الإصابة الإقفارية. يتم تحفيز التعبير عن GluN3A، الذي يلعب دورًا وقائيًا للأعصاب، بسرعة أثناء نقص تروية الدماغ ونقص الأكسجة. قيمت هذه الدراسة تأثير إعطاء البيراسيتام على مستويات BDNF وGluN3A في أنسجة المخ لتحديد قدرته على الوقاية من الشلل الدماغي. في هذه الدراسة التجريبية مع تصميم مجموعة مراقبة بعد الاختبار فقط، تم إنشاء نموذج فأر للشلل الدماغي عن طريق حقن الفئران الحوامل بـ LPS في أيام الحمل 15 و17 و19؛ تم إعطاء البيراسيتام عن طريق الفم في اليوم 10.5. تم تقييم مستويات البروتين BDNF وGluN3A وتعبير mRNA في أنسجة المخ الجنينية لـ 36 شخصًا باستخدام مقايسة الامتصاص المناعي المرتبط بالإنزيم (ELISA) وتفاعل البوليميراز المتسلسل في الوقت الحقيقي (RT-PCR). اختلفت مستويات البروتين BDNF وGluN3A في دماغ الجنين بشكل كبير بين مجموعتي التحكم والعلاج (P <0.05). ولوحظ انخفاض في مستويات الرنا المرسال ومستويات البروتين لـ BDNF وGluN3A في جميع مجموعات العلاج، لكن التحليل الإحصائي لـ RT-PCR لم يكشف عن فروق ذات دلالة إحصائية بين مجموعتي المراقبة والعلاج (p > 0.05). تشير هذه النتائج إلى أن البيراسيتام يمكن أن يمنع الشلل الدماغي في نموذج الفئران الجنينية الذي تم إنشاؤه عن طريق حقن LPS قبل الولادة، كما تم تقييمه من خلال التعبير البروتيني لـ BDNF وGluN3A mRNA.
Received 01 /02/2024
Revised 05 /03/2024
Accepted 07 /03/2024
Published Online First 20 /06/2024
المراجع
Joshua AV. Cerebral Palsy: An Overview of Etiology, Types and Comorbidities. OBM Neurobiol.2022; 6 (2): 1-30. https://doi.org/10.21926/obm.neurobiol.2202120
Reddy N, Doyle M, Hanagandi P, Taranath A, Dahmoush H, Krishnan P, et.al. Neuroradiological mimics of periventricular leukomalacia. J Child Neurol. 2022; 37(2): 151-167. https://doi.org/10.1177/08830738211026052
Khurana R, Shyamsundar K, Taank P, Singh A. Periventricular leukomalacia: an ophthalmic perspective. Med J Armed Forces India. 2021; 77(2): 147–153. https://doi.org/10.1016/j.mjafi.2020.05.013
Paul S, Nahar A, Bhagawati M, Kunwar AJ. A Review on Recent Advances of Cerebral Palsy. Oxid Med Cell Longev. 2022;2022:.2622310. https://doi.org/10.1155/2022/2622310
Moretto E, Murru L, Martano G, Sassone J, Passafaro M. Glutamatergic synapses in neurodevelopmental disorders.Prog Neuro-Psycho pharm. Biol Psychiatry. 2018; 84: 328 342.https://doi.org/10.1016/j.pnpbp.2017.09.014
Hanna H, Youness ER, Orban HAA, El-Bassyouni HT. BDNF as a potential predictive biomarker for patients with pediatric cerebral palsy. F1000 Res. 2022; 11: 1347.https://doi.org/10.12688/f1000research.127917.1.
Bossi S, Dhanasobhon D, Ellis-Davies GCR, Frontera J, de Brito Van Velze M, Lourenço J, et.al. GluN3A excitatory glycine receptors control adult cortical and amygdalar circuits. Neuron. 2022; 110(15): 2438–2454. https://doi.org/10.1016/j.neuron.2022.05.016
Abd Elmagid DS, Magdy H. Evaluation of risk factors for cerebral palsy. Egypt J Neurol Psychiatr Neurosurg. 2021; 57: 1-9. https://doi.org/10.1186/s41983-020-00265-1
Faradila F, Yuliarni S, Rika S, Nur I. Liputo. The Effect of Combination Ovariectomy and D-galactose Administration on Alzheimer’s Animal Model. Baghdad Sci J. 2022; 19(5):1021. http://dx.doi.org/10.21123/bsj.2022.5486
Ahmadi SAY, Beigi Boroujeni M, Pajouhi N, Hasanvand A, Hasanvand A, Jamei SB, et al. Effect of Testosterone Enanthate Modeling of Polycystic Ovary on Liver Irs-2 mRNA Expression in Rats: A Brief Report. Baghdad Sci J. 2021; 18(3): 0480. https://doi.org/10.21123/bsj.2021.18.3.0480
Kakooza-Mwesige A, Andrews C, Peterson S, Mangen FW, Eliasson AC, Forssberg H. Prevalence of cerebral palsy in Uganda: a population-based study. Lancet Glob Health. 2017; 5: 1275–82. https://doi.org/10.1016/S2214-109X(17)30374-1
Woods L, Perez-Garcia V, Hemberger M. Regulation of placental development and its impact on fetal growth—new insights from mouse models. Front endocrinol. 2018; 9: 570.https://doi.org/10.3389/fendo.2018.00570
Chaokromthong K, Sintao N. Sample size estimation using Yamane and Cochran and Krejcie and Morgan and green formulas and Cohen statistical power analysis by G* Power and comparisions. APHEIT International Journal. 2021; 10(2): 76-86.
Arifin WN, Zahiruddin WM. Sample size calculation in animal studies using resource equation approach. The Malays J Med Sci. 2017; 24(5): 101-105.https://doi.org/10.21315/mjms2017.24.5.11
Bernard D. Animal models of cerebral palsy. Dev Med Child Neurol. 2020; 6 (1): 4-4. https://doi.org/10.1111/dmcn.14397
Liu L, Fang L, Duan B, Wang Y, Cui Z, Yang L, et al. Multi-Hit White Matter Injury-Induced Cerebral Palsy Model Established by Perinatal Lipopolysaccharide Injection. Front Pediatr. 2022; 10: 867410. https://doi.org/10.3389/fped.2022.867410
Skrzypczak-Wiercioch A, Sałat K. Lipopolysaccharide-Induced Model of Neuroinflammation: Mechanisms of Action, Research Application and Future Directions for Its Use. Molecules (Basel, Switzerland). 2022; 7(17): 5481. https://doi.org/10.3390/molecules27175481
Shrestha S, Singh M, Mishra SP. The Effect of Piracetam on Valproic Acid Induced Congenital Malformations in Swiss Albino Mice. Nepal Med Coll J. 2019; 21(3): 204-209. https://doi.org/10.3126/nmcj.v21i3.26459
Zhao J, Bi W, Xiao S, Lan X, Cheng X, Zhang J, et al. Neuroinflammation induced by lipopolysaccharide causes cognitive impairment in mice. Sci Rep. 2019; 9: 5790. https://doi.org/10.1038/s41598-019-42286-8
Failla MD, Conley YP, Wagner AK. Brain-Derived Neurotrophic Factor (BDNF) in Traumatic Brain Injury-Related Mortality: Interrelationships between Genetics and Acute Systemic and Central Nervous System BDNF Profiles. Neurorehabil Neural Repair 2016; 30: 83–93. https://doi.org/10.1177/1545968315586465
Gustafsson D, Klang A, Thams S, Rostami E. The role of BDNF in experimental and clinical traumatic brain injury. Int J Mol Sci. 2021; 22(7): 3582. https://doi.org/10.3390/ijms22073582
Ng TK, Coughlan C, Heyn P C, Tagawa A, Carollo J J, Kua E H. Increased plasma brain-derived neurotrophic factor (BDNF) as a potential biomarker for and compensatory mechanism in mild cognitive impairment: a case-control study. Aging. 2021; 13(19): 22666-22689. https://doi.org/10.18632/aging.203598
Hansen SL, Lorentzen J, Pedersen LT, Hendrich FL, Jorsal M, Pingel J. Suboptimal 11nutrition and low physical activity are observed together with reduced plasma brain-derived neurotrophic Factor (BDNF) concentration in children with severe cerebral palsy (CP). Nutrients. 2019; 11(3): 620. https://doi.org/10.3390/nu11030620
Pérez-Otaño I, Larsen R S, Wesseling JF. Emerging roles of GluN3-containing NMDA receptors in the CNS. Nat Rev Neurosci. 2016; 17(10): 623-635. https://doi.org/10.1038/nrn.2016.92
التنزيلات
إصدار
القسم
الرخصة
الحقوق الفكرية (c) 2024 Dudy Aldiansyah, Sarma Nursani Lumbanraja, Khairul Putra Surbakti , Isti Ilmiati Fujiati, Agus Sulistyono
هذا العمل مرخص بموجب Creative Commons Attribution 4.0 International License.