دور مستوى مصل بروتين-1 شبيه الكيتيناز-3 (YKL-40) وارتباطه بالسيتوكين المنبه للالتهابات في مرضى التهاب المفاصل الروماتويدي
محتوى المقالة الرئيسي
الملخص
بروتين-1 شبيه الكيتيناز-3 (YKL-40) هو بروتين سكري ينتج بشكل أساسي في المفصل الملتهب ويلعب دورًا مهمًا في العمليات الالتهابية. الهدف من البحث هو دراسة دور YKL-40 كمعلم حيوي لالتهاب المفاصل الروماتويدي (RA) مقارنة بالواسمات المسببة للالتهابات ونشاط المرض. شملت الدراسة 58 مريضا و18 شخص سليم كمجموعة تحكم. تم قياس درجة نشاط المرض (DAS-28) ومؤشر نشاط المرض السريري (CDAI). مستوى مصل YKL-40، عامل نخر الورم-الفا (TNF-α)، إنترلوكين-1بيتا (IL-1β)، سرعة ترسب الدم (ESR)، عامل الروماتويد (RF)، البروتين المتفاعل C (CRP)، وتم تقييم الأجسام المضادة للبروتين السيتروليني (ACPA). أظهرت النتيجة أن متوسط مستوى YKL-40 في المصل كان 5.42 نانوغرام / مل، ومستوى TNF-a كان 123.6 نانوغرام / مل، ومستوى IL-1B 204.365 بيكوغرام / ديسيلتر أعلى بشكل ملحوظ في المرضى مقارنة بمجموعة التحكم 3.28 نانوغرام / مل ، 56.47 نانوغرام / مل و 67.887 بيكوغرام / ديسيلتر على التوالي. لم يكن هناك ارتباط بين YKL-40 في المصل ونشاط المرض، بالرغم من وجود ارتباطات مع TNF-α وIL-1β. كما اظهر تحليل خصائص المستقبل التشغيلية باحتلال YKL-40 مساحة تحت المنحنى قدرها 0.769 في مرضى RA. يشير YKL-40 إلى مستويات جيدة لتنبؤ RA عند 2.47 نانوغرام / مل، والحساسية 87.9٪، والنوعية 58.6٪، والدقة 78.1٪، وPPV 80.9٪، وNPV 70,8٪. في الختام، تم العثور على مستوى أعلى من مصل YKL-40 في مرضى RA. أشارت نتائج دراستنا إلى وجود ارتباط قوي بين YKL-40 والعلامات الحيوية المسببة للالتهابات. نتيجة لذلك، قد تلعب هذه المؤشرات الحيوية معًا دورًا في التسبب في مرض التهاب المفاصل الروماتويدي ، ويمكن استخدام YKL-40 كمؤشر بيولوجي تشخيصي محتمل لـ التهاب المفاصل الروماتويدي.
Received 6/5/2021
Accepted 6/7/2021
Published Online First 20/3/2022
تفاصيل المقالة
هذا العمل مرخص بموجب Creative Commons Attribution 4.0 International License.
كيفية الاقتباس
المراجع
Lin Y-J, Anzaghe M, Schülke S. Update on the pathomechanism, diagnosis, and treatment options for rheumatoid arthritis. Cells. 2020;9(4):880.
Giannini D, Antonucci M, Petrelli F, Bilia S, Alunno A, Puxeddu I. One year in review 2020: pathogenesis of rheumatoid arthritis. Clin Exp Rheumatol. 2020;38:387–97.
Oderda GM, Lawless GD, Wright GC, Nussbaum SR, Elder R, Kim K, et al. The potential impact of monitoring disease activity biomarkers on rheumatoid arthritis outcomes and costs. Per Med [Internet]. 2018 Jul;15(4):291–301. Available from: https://www.futuremedicine.com/doi/10.2217/pme-2018-0001
Brooks PM. The burden of musculoskeletal disease—a global perspective. Clin Rheumatol. 2006;25(6):778–81.
Gossec L, Combescure C, Rincheval N, Saraux A, Combe B, Dougados M. Relative clinical influence of clinical, laboratory, and radiological investigations in early arthritis on the diagnosis of rheumatoid arthritis. Data from the French Early Arthritis Cohort ESPOIR. J Rheumatol. 2010;37(12):2486–92.
Mouterde G, Rincheval N, Lukas C, Daien C, Saraux A, Dieudé P, et al. Outcome of patients with early arthritis without rheumatoid factor and ACPA and predictors of rheumatoid arthritis in the ESPOIR cohort. Arthritis Res Ther. 2019;21(1):140.
Wu C-Y, Yang H-Y, Luo S-F, Lai J-H. From Rheumatoid Factor to Anti-Citrullinated Protein Antibodies and Anti-Carbamylated Protein Antibodies for Diagnosis and Prognosis Prediction in Patients with Rheumatoid Arthritis. Int J Mol Sci. 2021;22(2):686.
Reed E, Hedström AK, Hansson M, Mathsson-Alm L, Brynedal B, Saevarsdottir S, et al. Presence of autoantibodies in “seronegative” rheumatoid arthritis associates with classical risk factors and high disease activity. Arthritis Res Ther. 2020;22(1):1–11.
Rocha S de B, Baldo DC, Andrade LEC. Clinical and pathophysiologic relevance of autoantibodies in rheumatoid arthritis. Adv Rheumatol. 2019;59:2.
Narayan V, Pallinti V, Ganesan N. A study of serum YKL-40 and its correlation with traditional biomarkers in rheumatoid arthritis patients. Indian J Rheumatol. 2019;14(3):200.
Lee YH, Song GG. YKL-40 Levels in Rheumatoid Arthritis and Their Correlation with Disease Activity: A Meta-analysis. J Rheum Dis. 2019;26(4):257–63.
He CH, Lee CG, Cruz CS Dela, Lee C-M, Zhou Y, Ahangari F, et al. Chitinase 3-like 1 regulates cellular and tissue responses via IL-13 receptor α2. Cell Rep. 2013;4(4):830–41.
Mateen S, Moin S, Shahzad S, Khan AQ. Level of inflammatory cytokines in rheumatoid arthritis patients: Correlation with 25-hydroxy vitamin D and reactive oxygen species. PLoS One. 2017;12(6):e0178879.
Brzustewicz E, Bryl E. The role of cytokines in the pathogenesis of rheumatoid arthritis – Practical and potential application of cytokines as biomarkers and targets of personalized therapy. Cytokine [Internet]. 2015 Dec;76(2):527–36. Available from: https://linkinghub.elsevier.com/retrieve/pii/S1043466615300491
Kany S, Vollrath JT, Relja B. Cytokines in inflammatory disease. Int J Mol Sci. 2019;20(23):6008.
Shehu S, Kurya AU, Aliyu U, Sharma DC. Role of Inflammatory Cytokines in the Pathogenesis of Rheumatoid Arthritis and Novel Therapeutic Targets. Asian J Immunol. 2020;37–46.
Li XZ, Zhao SC, Cai XL, Wang YF, Chen J, Ma XF, et al. Differences in expression of YKL-40 and TLR4 in nasal sinus mucosa of chronic sinusitis patients with and without nasal polyps. J Biol Regul Homeost Agents. 2018;32(3):537–43.
Funovits J, Aletaha D, Bykerk V, Combe B, Dougados M, Emery P, et al. The 2010 American College of Rheumatology/European League Against Rheumatism classification criteria for rheumatoid arthritis: methodological report phase I. Ann Rheum Dis. 2010;69(9):1589–95.
Hoo ZH, Candlish J, Teare D. What is an ROC curve? Emerg Med J. 2017;34(6).
Kazakova MH, Batalov AZ, Mateva NG, Kolarov ZG, Sarafian VS. YKL-40 and cytokines-A new diagnostic constellation in rheumatoid arthritis? Folia Med (Plovdiv). 2017;59(1):37–42.
Jafari-Nakhjavani MR, Ghorbanihaghjo A, Bagherzadeh-Nobari B, Malek-Mahdavi A, Rashtchizadeh N. Serum YKL-40 levels and disease characteristics in patients with rheumatoid arthritis. Caspian J Intern Med. 2019;10(1):92.
Centola M, Cavet G, Shen Y, Ramanujan S, Knowlton N, Swan KA, et al. Development of a multi-biomarker disease activity test for rheumatoid arthritis. PLoS One. 2013;8(4):e60635.
S. Johansen Paul A. Price, Mohammed Sharif, Julia JRK. Serum YKL-40 concentrations in patients with early rheumatoid arthritis: relation to joint destruction. Scand J Rheumatol. 2001;30(5):297–304.
Arleevskaya MI, Gabdoulkhakova AG, Filina J V, Zabotin AI, Tsibulkin AP. Mononuclear phagocytes in rheumatoid arthritis patients and their relatives–family similarity. Open Rheumatol J. 2011;5:36.
Lee CG, Da Silva CA, Dela Cruz CS, Ahangari F, Ma B, Kang M-J, et al. Role of chitin and chitinase/chitinase-like proteins in inflammation, tissue remodeling, and injury. Annu Rev Physiol. 2011;73:479–501.
Curtis JR, Weinblatt ME, Shadick NA, Brahe CH, Østergaard M, Hetland ML, et al. Validation of the adjusted multi-biomarker disease activity score as a prognostic test for radiographic progression in rheumatoid arthritis: a combined analysis of multiple studies. Arthritis Res Ther. 2021;23(1):1–13.
Matsumoto T, Tsurumoto T. Serum YKL-40 levels in rheumatoid arthritis: correlations between clinical and laboratory parameters. Clin Exp Rheumatol. 2001;19(6):655–60.
Kassem E, Mahmoud L, Salah W. Study of Resistin and YKL-40 in rheumatoid arthritis. J Am Sci. 2010;6(10):1004–12.
Al-Sayed MT, Mohammed AS, Mohammed AHAF, Ibrahim AM, Moshrif A. Diagnostic and prognostic values of serum HSP70 and YKL-40 in patients with rheumatoid arthritis. Int J Clin Rheumtol. 2017;12(3):59.
Kazakova M, Batalov A, Deneva T, Mateva N, Kolarov Z, Sarafian V. Relationship between sonographic parameters and YKL-40 levels in rheumatoid arthritis. Rheumatol Int. 2013;33(2):341–6.
Shen R, Ren X, Jing R, Shen X, Chen J, Ju S, et al. Rheumatoid factor, anti-cyclic citrullinated peptide antibody, C-reactive protein, and erythrocyte sedimentation rate for the clinical diagnosis of rheumatoid arthritis. Lab Med. 2015;46(3):226–9.
Ling H, Recklies AD. The chitinase 3-like protein human cartilage glycoprotein 39 inhibits cellular responses to the inflammatory cytokines interleukin-1 and tumour necrosis factor-alpha. Biochem J. 2004;380(3):651–9.
Mohammadi E, Vatanpour H, Shirazi FH. Immunomodulatory effects of bee venom in human synovial fibroblast cell line. Iran J Pharm Res IJPR. 2015;14(1):313.