تقدير مستويات CTHRC1 وبعض السيتوكينات في المرضى العراقيين المصابين بالتهاب المفاصل الرثوي

محتوى المقالة الرئيسي

Ahmed R. Oleiwi
https://orcid.org/0000-0002-8105-8188
Ayaid Khadem Zgair

الملخص

بروتين الكولاجين الثلاثي الحلزوني المتكرر المحتوي على 1 (CTHRC1) هو علامة أساسية لالتهاب المفاصل الرثوي، ولكن علاقته بالعلامات المؤيدة للالتهابات والمضادة للالتهابات قد تمت تغطيتها بشكل قليل في البحوث. لتقييم مستوى بروتين CTHRC1  في مصل 100 مريض مصاب بالتهاب المفاصل الرثوي و 25 شخصًا من الأصحاء. حيث تم مقارنة مستوياته بمستويات عامل نخر الورم ألفا (TNF-α) ، والبين الابيضاضي-10 (IL-10) ، ونشاط مرض التهاب المفاصل الرثوي ، والعوامل الالتهابية الاخرى. تم العثور على ارتفاع كبير في مستويات مصل  ( 29.367 ng/ml) CTHRC1  و  (63.488 pg/ml) TNF-α و IL-10  ((67.1 pg/ml في مصل المريض بالمقارنة مع تلك الموجودة في مصل الأصحاء ( 15.732 ng/ml) CTHRC1   ، TNF-α   (33.788 pg/ml) ،و (25.122 pg/ml) IL-10 على التوالي في (P <0.05). لم يكن هناك ارتباط معنوي بين مستوى CTHRC1 و DAS28 في الدم (r= 0.046, P=0.650)، بينما كانت هناك ارتباطات طردية معنوية بين مستويات CTHRC1 و CRP في الدم (r= 0.372, P=0.0001)، ، ACPA (r = 0.254, P=0.0001) ، P = 0.01) ، TNF-α (r = 0.202 ، و P = 0.044) ،  .IL-10 (r = 0.260قدم مستوى  CTHRC1  (> 25.385 ng/ml) بالاشتراك مع مستويات CRP و ACPA مؤشرًا جيدًا لتنبؤ التهاب المفاصل الرثوي مع الحساسية = 71.0 % ، النوعية = 100.0 % ، الدقة =0.71 % ، القيمة التنبؤية الإيجابية % 100.0 =، والقيمة التنبؤية السلبية 46.3= %. أظهرت الدراسة وجود ارتباط كبير بين مستويات CTHRC1 و TNF-α و IL-10. هذه الجزيئات قد تلعب دورًا بارزًا في مسببات وتشخيص التهاب المفاصل الرثوي.

تفاصيل المقالة

كيفية الاقتباس
1.
تقدير مستويات CTHRC1 وبعض السيتوكينات في المرضى العراقيين المصابين بالتهاب المفاصل الرثوي. Baghdad Sci.J [انترنت]. 20 يونيو، 2023 [وثق 20 مايو، 2024];20(3(Suppl.):0928. موجود في: https://bsj.uobaghdad.edu.iq/index.php/BSJ/article/view/8036
القسم
article

كيفية الاقتباس

1.
تقدير مستويات CTHRC1 وبعض السيتوكينات في المرضى العراقيين المصابين بالتهاب المفاصل الرثوي. Baghdad Sci.J [انترنت]. 20 يونيو، 2023 [وثق 20 مايو، 2024];20(3(Suppl.):0928. موجود في: https://bsj.uobaghdad.edu.iq/index.php/BSJ/article/view/8036

المراجع

Petrelli F, Mariani FM, Alunno A, Puxeddu I. Pathogenesis of rheumatoid arthritis: one year in review 2022. Clin Exp Rheumatol; 2022; 40(3). https://doi.org/10.55563/clinexprheumatol/l9lyen.

Jang S, Kwon E-J, Lee JJ. Rheumatoid arthritis: pathogenic roles of diverse immune cells. Int J Mol Sci. 2022; 23(2): 905. https://doi.org/10.3390/ijms23020905.

Al Ghuraibawi ZAG, Sharquie IK, Gorial FI. Diagnostic potential of interleukin-40 (IL-40) in rheumatoid arthritis patients. Egypt. Rheumatol. Elsevier; 2022; 44(4): 377–380. https://doi.org/10.1016/j.ejr.2022.07.007.

Mohammed NUG, Khaleel FM, Gorial FI. The Role of Serum Chitinase-3-Like 1 Protein (YKL-40) Level and its Correlation with Proinflammatory Cytokine in Patients with Rheumatoid Arthritis. Baghdad Sci J. 2022; 19(5): 1014-1020. https://doi.org/10.21123/bsj.2022.6293.

Al-Hashimi NH, Al-Gebori AM, Alosami MHM. Evaluation of the Human Pulmonary Activation-Regulated Chemokine (CCL18/PARC) and Alkaline Phosphatase (ALP) Levels in Iraqi Patients with Rheumatoid Arthritis. Iraqi J Sci. 2020; 713–719. https://doi.org/10.24996/ijs.2020.61.4.1.

Wu C-Y, Yang H-Y, Luo S-F, Lai J-H. From Rheumatoid Factor to Anti-Citrullinated Protein Antibodies and Anti-Carbamylated Protein Antibodies for Diagnosis and Prognosis Prediction in Patients with Rheumatoid Arthritis. Multidisciplinary Digital Publishing Institute. Int J Mol Sci. 2021; 22(2): 686. https://doi.org/10.3390/ijms22020686.

Fabian CBLR. Autoantibodies Associated with Rheumatoid Arthritis: Rheumatoid Factor and Anti-Citrullinated Peptide Antibodies. Juniper Publishers Inc. Open access j orthop rheum. 2019; 14(1): 29–34. https://doi.org/10.19080/OROAJ.2019.14.555880.

Shekhani MT, Forde TS, Adilbayeva A, Ramez M, Myngbay A, Bexeitov Y, et al. Collagen triple helix repeat containing 1 is a new promigratory marker of arthritic pannus. Arthritis Res Ther. Springer. 2016; 18(1): 1–14. https://doi.org/10.1186/s13075-016-1067-1.

Selim ZI, Gamal RM, Araby LA, Badawy ER, Gamal NM. Collagen triple helix repeat containing 1 (CTHRC1) protein: A promising biomarker for evaluation of rheumatoid arthritis patients. Egypt. Rheumatol. Elsevier. 2022; 44(1): 11–14. https://doi.org/10.1016/j.ejr.2021.07.003.

Myngbay A, Bexeitov Y, Adilbayeva A, Assylbekov Z, Yevstratenko BP, Aitzhanova RM, et al. CTHRC1: a new candidate biomarker for improved rheumatoid arthritis diagnosis. Front Immunol Frontiers Media SA. 2019; 10: 1353. https://doi.org/10.3389/fimmu.2019.01353.

Hu T, Liu Y, Tan L, Huang J, Yu J, Wu Y, et al. Value of serum collagen triple helix repeat containing-1 (CTHRC1) and 14-3-3η protein compared to anti-CCP antibodies and anti-MCV antibodies in the diagnosis of rheumatoid arthritis. Br J Biomed Sci. Taylor & Francis. 2021;78(2): 67–71. https://doi.org/10.1080/09674845.2020.1810400.

Stohn JP, Perreault NG, Wang Q, Liaw L, Lindner V. Cthrc1, a novel circulating hormone regulating metabolism. Public Library of Science San Francisco, USA; 2012; 7(10). https://doi.org/10.1371/journal.pone.0047142.

Mizoguchi F, Slowikowski K, Wei K, Marshall JL, Rao DA, Chang SK, et al. Functionally distinct disease-associated fibroblast subsets in rheumatoid arthritis. Nature Publishing Group. Nat Commun. 2018; 9(1): 1–11. https://doi.org/10.1038/s41467-018-02892-y.

Kimura H, Kwan KM, Zhang Z, Deng JM, Darnay BG, Behringer RR, et al. Cthrc1 is a positive regulator of osteoblastic bone formation. PloS one. Public Library of Science San Francisco, USA. 2008; 3(9). https://doi.org/10.1371/journal.pone.0003174.

Takeshita S, Fumoto T, Matsuoka K, Park K, Aburatani H, Kato S, et al. Osteoclast-secreted CTHRC1 in the coupling of bone resorption to formation. J Clin Invest. 2013; 123(9): 3914–3924. https://doi.org/10.1172/JCI69493.

Myngbay A, Manarbek L, Ludbrook S, Kunz J. The role of collagen triple helix repeat-containing 1 protein (CTHRC1) in rheumatoid arthritis. Int J Mol Sci. 2021; 22(5): 2426. https://doi.org/10.3390/ijms22052426.

Masoumi M, Bashiri H, Khorramdelazad H, Barzaman K, Hashemi N, Sereshki HA, et al. Destructive roles of fibroblast-like synoviocytes in chronic inflammation and joint damage in rheumatoid arthritis. Inflammation. Springer. 2021; 44(2): 466–479. https://doi.org/10.1007/s10753-020-01371-1.

Kondo N, Kuroda T, Kobayashi D. Cytokine networks in the pathogenesis of rheumatoid arthritis. Int J Mol Sci. 2021; 22(20): 10922. https://doi.org/10.3390/ijms222010922.

Dissanayake K, Jayasinghe C, Wanigasekara P, Sominanda A. Potential applicability of cytokines as biomarkers of disease activity in rheumatoid arthritis: Enzyme-linked immunosorbent spot assay-based evaluation of TNF-α, IL-1β, IL-10 and IL-17A. PloS one. 2021; 16(1). https://doi.org/10.1371/journal.pone.0246111.

Qu CH, Hou Y, Bi YF, Han QR, Jiao CH, Zou QF. Diagnostic values of serum IL-10 and IL-17 in rheumatoid arthritis and their correlation with serum 14-3-3η protein. Eur Rev Med Pharmacol Sci. 2019; 23(5): 1899–1906.

Aletaha D, Neogi T, Silman AJ, Funovits J, Felson DT, Bingham III CO, et al. Correction. Ann. Rheum Dis. 2010; 69(10): 1892–1892. https://doi.org/10.1136/ard.2010.138461corr1

van Delft MAM, Huizinga TWJ. An overview of autoantibodies in rheumatoid arthritis. J Autoimmun. 2020; 110: 102392. https://doi.org/10.1016/j.jaut.2019.102392.

Farhan LO, Taha EM, Farhan AM. A Case control study to determine Macrophage migration inhibitor, and N-telopeptides of type I bone collagen Levels in the sera of osteoporosis patients. Baghdad Sci J. 2022; 19(4): 848. https://doi.org/10.21123/bsj.2022.19.4.0848.

المؤلفات المشابهة

يمكنك أيضاً إبدأ بحثاً متقدماً عن المشابهات لهذا المؤلَّف.