مستخلصات مختلفة لبعض النباتات الطبية كمثبطات لنشاط بيتا لاكتاماز

محتوى المقالة الرئيسي

Huda S. A. Al-Hayanni
http://orcid.org/0000-0002-3074-1331
Hamed El-Shora

الملخص

تمت دراسة التأثير المثبط لإنزيم بيتا لاكتاماز من  S. sciuriو Klebsiella pneumoniae بواسطة مستخلصات لعشرة نباتات طبية وقد تمت عملية الاستخلاص باستخدام الاسيتون والايثانول والماء في المختبر بطريقة طبق أجار اليود - النشا ، وأظهرت النتائج أن طريقة طبق أجار اليود - النشا يمكن استخدامها للكشف عن مثبطات البيتا لاكتاماز من المستخلصات النباتية المستخدمة قيد البحث. وقد أظهرت ثلاثــة مستخــلصات نبــاتية  وهي الونكا Catharanthus roseus, الكافور Eucalyptus camaldulensis  والفلفل العريض Schinus terebinthifolius) فعالية واضحة لتثبيط بيتا لاكتاماز من  Staphylococcus sciuri. وعلي الجانب الآخر  أظهرت مستخلصات نباتات الكافور Eucalyptus camaldulensis  والفلفل العريض Schinus terebinthifolius) نشاط مثبطا لبيتا لاكتاماز المعزول من  Klebsiella pneumoniae. وأوضحت النتائج أن مستخلصات الأسيتون كانت الأكثر تثبيطا للإنزيم من مستخلصات الإيثانول  والمستخلصات المائية. وأظهرت النتائج أن بيتا لاكتاماز المعزول من  S. sciuri كان الأكثر تأثــراً سلبا بواسطــة المستخلصات النباتية من بيتا لاكتــاماز المعزول من  .K. pneumonia

تفاصيل المقالة

كيفية الاقتباس
1.
مستخلصات مختلفة لبعض النباتات الطبية كمثبطات لنشاط بيتا لاكتاماز. Baghdad Sci.J [انترنت]. 10 مارس، 2021 [وثق 22 يوليو، 2024];18(1):0047. موجود في: https://bsj.uobaghdad.edu.iq/index.php/BSJ/article/view/4478
القسم
article

كيفية الاقتباس

1.
مستخلصات مختلفة لبعض النباتات الطبية كمثبطات لنشاط بيتا لاكتاماز. Baghdad Sci.J [انترنت]. 10 مارس، 2021 [وثق 22 يوليو، 2024];18(1):0047. موجود في: https://bsj.uobaghdad.edu.iq/index.php/BSJ/article/view/4478

المراجع

Horie H, Chiba A, Wada S. Inhibitory effect of soy saponins on the activity of β-lactamases, including New Delhi metallo-β-lactamase, J Food Sci Technol. 2018; 55(5): 1948–1952.

Askarinia M, Ganji A, Jadidi-Niaragh F, Hasanzadeh S, Mohammadi B, Ghalamfarsa F, et al. Review on medicinal plant extracts and their active ingredients against methicillin-resistant and methicillin-sensitive Staphylococcus aureus. J. Herbmed Pharmacol. 2019; 8(3): 315-320.

Akkiraju L J, Sowmya M, Deepthi C, Lakshmi V V. Herbal extracts as beta- lactamase inhibitors. Int. J. Sci. Eng. Res. 2015; 6 (2): 68-70.

Nader MI, Ghanima KK, Ali SA, Azhar DA. Antibacterial activity of ginger extracts and its essential oil on some of pathogenic bacteria. Baghdad Sci. J. 2010; 7(3):1159-1165.

Shaikh S, Lochan R, Kaul P, Tandon GD. Beta lactamase inhibitors from indigenous herbs and spices. Res. J. Pharm., Biol. Chem. Sci. 2014; 5 (2): 275-385.

Al-Mossawei MT., Ali AH, Abid HS, Murad R H .Antimicrobial activity of ethanolic extracts of Raphanus sativus and Cyperus rotundus against some pathogenic bacteria and Candida albicans. Baghdad Sci. J. 2014; 11(2): 748-756.

Abdallah HM, Asfour HZ, El-Halawany AM, Elfaky MA. Saudi plants as a source of potential β-lactamase inhibitors. Pakistan J. Pharma. Sci. 2018; 31(1): 325-332.

Abdou, R H, Saleh SY, Khalil WF. Toxicological and biochemical studies on Schinus terebinthifolius concerning its curative and hepatoprotective effects against carbon tetrachloride-induced liver injury. Pharmacogn. Mag. 2015; 11 (1): 93-101.

Gangoué-Piéboji J, Baurin S, Frère JM, Ngassam P, Ngameni B, Azebaze A, et al. Schinus terebinthifolius Raddi (Anacardiaceae) leaf extracts: Antibacterial activity against two Agrobacterium tumefaciens strains. J. Crop Prot. 2015; 4 (1): 85-96.

Al-Hayanni HSA, El-Shora HM .Beta-lactamase inhibitory effect of some medicinal plants. Res. j. pharm. biol. chem. sci. 2018; 9 (5): 263-274.

Ranade Y A, Dharmadhikari, S M, Wadegaonkar P A. Screening, production, purification and characterization of beta-lactamase from uropathogenic E. coli. Eur. J. Exp. Biol. 2013; 3 (1): 434-442.

Ghanney, N, Rhouma, A. Schinus terebinthifolius Raddi (Anacardiaceae) leaf extracts: Antibacterial activity against two Agrobacterium tumefaciens strains. J. Crop Prot. 2015;4 (1): 85-96.

Djeussi D E, Noumedem JA K, Seukep J A, Fankam A G, Voukeng I K, Tankeo S B, et al. Antibacterial activities of selected edible plants extracts against multidrug-resistant Gram-negative bacteria. BMC Complement. Altern. Med. 2013; 13: 164-171.

Yang Z, Niu Y, Le Y, Ma X, Qiao C. Beta-lactamase inhibitory component from the roots of Fissistigma cavaleriei. Phytomed. 2010; 17 (2): 139-141.

Das S, Kumar N, Vishweswaraiah R H, Haldar L, Gaare, M, Singh V K, et al. Microbial based assay for specific detection of β-lactam group of antibiotics in milk. J. Food Sci. Technol. 2014; 51(6): 1161-1166.

Kesharwani AK, Mishra J. Detection of β-lactamase and antibiotic susceptibility of clinical isolates of Staphylococcus aureus. Biocat. Agricul. Biotechnol. 2019; 17: 720-725.

Arora S, Nandi S. Reversion of antibiotic resistance with beta-lactamase inhibitor from medicinal plants. Asian J. Pharmac. Clin. Res. 2017; 10: 204-208.

Solanki SS, Selvanayagam M. Beta-lactamase inhibitory potential and antibacterial potentiation of certain medicinal plants and extracts against extended spectrum beta-lactamase producers. Adv. Bio. Tech. 2013; 12(7): 6-10.

Shakya AK. Medicinal plants: Future source of new drugs. Int. J. Herb. Med. 2016; 4(4): 59–64.

Boussoualim N, Trabsa H, Krache I, Arrar L, Baghiani, A. Anti-bacterial and β-Lactamase inhibitory effects of Anchusa azurea and Globularia alypum extracts. Res. J. Pharmac. Biolo. Chem. Sci. 2014; 5(1): 742-749.

Al Sahli AA, Abdulkhair WM .Inhibition of beta-lactamase enzyme of Pseudomonas aeruginosa by clavulanic acid of Rumex vesicarius L. Afr. J. Agric. Res.2011; 6 (12): 2908-2915.

Mandal S, Dias R, Franco O. Phenolic compounds in antimicrobial. J. Med. Food. 2017; 20(10): 1031-1038.