الجسيمات النانوية الفضية والنحاسية على النشاط الإنزيمي للكائنات الدقيقة المحمولة بالتربة
DOI:
https://doi.org/10.21123/bsj.2022.6532الكلمات المفتاحية:
النحاس، النشاط الأنزيمي، الكائنات الدقيقة، الجسيمات النانوية، الفضةالملخص
تمت دراسة تأثير الجسيمات النانوية المعدنية التي تم تصنيعها بواسطة الكائنات الحية الدقيقة على الفطريات المجهرية التي تنقلها التربة Aspergillus terreus K-8. ثبت أن الجسيمات النانوية المعدنية التي يتم تصنيعها بواسطة الكائنات الحية الدقيقة تؤثر على النشاط الإنزيمي للبيئة المدروسة. تؤدي الجسيمات النانوية الفضية إلى انخفاض في نشاط السليولاز وتثبط نشاط الأميليز تمامًا للفطريات ، بينما تثبط جزيئات النحاس النانوية تمامًا نشاط كل من مركب السليولاز والأميلاز. تشير النتائج التي تم الحصول عليها إلى أن الاستخدام الواسع النطاق لجزيئات الفضة والنحاس قد يعطل العمليات البيولوجية في التربة ويسبب تغيرًا في الحالة الفسيولوجية والكيميائية الحيوية للكائنات الحية الدقيقة التي تنقلها التربة أيضًا.
Received 6/9/2021
Accepted 23/6/2022
Published Online First 25/11/2022
المراجع
Mahmoud A, Al-Qahtani K, Alflaij S, Al-Qahtani S, Alsamhan F. Green copper oxide nanoparticles for lead, nickel, and cadmium removal from contaminated water. Sci Rep. 2021; 11(1): 1-13.
Rakaa J. Preparation of Nanoparticles in an Eco-friendly Method using Thyme Leaf Extracts. Baghdad Sci J. 2020;17(2 (SI)): 0670.
Grasso G, Zane D, Dragone R. Microbial nanotechnology: challenges and prospects for green biocatalytic synthesis of nanoscale materials for sensoristic and biomedical applications. Nanomaterials. 2020; 10(1): 11.
Ahmad F, Ashraf N, Ashraf T, Zhou R, Yin D. Biological synthesis of metallic nanoparticles (MNPs) by plants and microbes: their cellular uptake, biocompatibility, and biomedical applications. Appl Microbiol Biotechnol. 2019; 103(7): 2913-2935.
Al-Ogaidi I. Detecting the antibacterial activity of green synthesized silver (Ag) nanoparticles functionalized with ampicillin (Amp). Baghdad Sci J. 2017; 14(1).
Mohammad D, Al-Jubouri S. Comparative antimicrobial activity of silver nanoparticles synthesized by Corynebacterium glutamicum and plant extracts. Baghdad Sci J. 2019; 16(3 Suppl.): 689-696.
Prasad R, Bhattacharyya A, Nguyen Q. Nanotechnology in sustainable agriculture: recent developments, challenges, and perspectives. Front Microbiol. 2017; 8: 1014.
Abebe B, Zereffa E, Tadesse A, Murthy H. A review on enhancing the antibacterial activity of ZnO: Mechanisms and microscopic investigation. Nanoscale Res Lett. 2020;15(1): 1-9.
Naz S, Gul A, Zia M. Toxicity of copper oxide nanoparticles: a review study. IET Nanobiotechnol. 2019; 14(1): 1-3.
Khan I, Saeed K, Khan I. Nanoparticles: Properties, applications and toxicities. Arab J Chem. 2019; 12(7): 908-31.
Kolesnikov S, Varduni V, Timoshenko A, Denisova T, Kazeev K, Akimenko Y. Estimation of Ecotoxicity of Nanoparticles of Cobalt, Copper, Nickel and Zinc Oxides on Biological Indicators of the State of Ordinary Chernozem. South Russ: Ecol Dev. 2020; 15(1): 130-136. https://doi.org/10.18470/1992-1098-2020-1-130-136
Sosedova L, Novikov M, Titov E. Impact of metal nanoparticles on the ecology of soil biocenosis (literature review). Gigiyena i Sanitariya. 2020; 99(10): 1061-1066. (in Russian).
Atlas R. Use of microbial diversity measurements to assess environmental stress. Curr Perspect Microbial Ecol. 1984: 540-545.
Fastovets I, Verkhovtseva N, Pashkevich E, Netrusov A. Silver nanoparticles: toxic effect on microorganisms and interaction with higher plants. Probl Agrokhim. Ekol. 2017; 1: 51-62. (in Russian).
Bashorov M, Kozlov G, Zaikov G, Mikitaev A. Polymers as natural nanocomposites. 2. The comparative analysis of reinforcement mechanisms. Chem Chem Technol. 2009; 3(3):183–185.
Abd-Alla M, Nafady N, Khalaf D. Assessment of silver nanoparticles contamination on faba bean-Rhizobium leguminosarum bv. viciae-Glomus aggregatum symbiosis: implications for induction of autophagy process in root nodule. Agric Ecosyst Environ. 2016; 218: 163-177.
Bondarenko O, Juganson K, Ivask A, Kasemets K, Mortimer M, Kahru A. Toxicity of Ag, CuO and ZnO nanoparticles to selected environmentally relevant test organisms and mammalian cells in vitro: a critical review. Arch toxicol. 2013; 87(7): 1181-1200.
Kim S, Sin H, Lee S, Lee I. Influence of metal oxide particles on soil enzyme activity and bioaccumulation of two plants. J Microbiol Biotechnol. 2013; 23(9): 1279-86.
Gladkova M, Terekhova V. Engineered nanomaterials in soil: Sources of entry and migration pathways. Mosc Univ Soil Sci Bull. 2013; 68(3): 129-134.
Ciloci D, Tiurina J, Labliuc S, Dvornina E, Clapco S, Bivol C, et al. Influence of nanooxides of some metals on biosynthesis of extracellular hydrolases of micromycetes. Bul Acad de Stiinte Republicii Mold. 2016; 330(3): 164-171. (in Russian).
Zaynitdinova L, Vokhidova N, Tashpulatov J, Kukanova S, Ashurov N, Juraeva R. Microorganisms-Producers of Nanoparticles of Silver. J Nanosci Nanotechnol, 2017; 3(1): 1-5.
Zaynitdinova L, Vokhidova N, Rashidova S, Kukanova S, Juraeva R, Tashpulatov J. Microbial Synthesis of Silver Nanoparticles by Pseudomonas sp. Cult. 2018; 1100: 0-9.
Kreibig U, Vollmer M. Optical properties of metal clusters. Springer Science & Business Media; 1991. 1995th Ed. 555 p.
Somogyi M. Notes on sugar determination. J Biol Chem. 1952; 195(1): 19-23.
Zvyagintsev D (Ed.). Methods of soil microbiology and biochemistry. Moscow State University Publishing House. 1991. 303 p (in Russian).
Lowry O, Rosebrough N, Farr A, Randall R. Protein measurement with the Folin phenol reagent. J Biol Chem. 1951; 193: 265-75.
Shobha G, Moses V, Ananda S. Biological synthesis of copper nanoparticles and its impact. Int J Pharm Sci Invent. 2014; 3(8): 6-28.
التنزيلات
منشور
إصدار
القسم
الرخصة
الحقوق الفكرية (c) 2022 مجلة بغداد للعلوم
هذا العمل مرخص بموجب Creative Commons Attribution 4.0 International License.
كيفية الاقتباس
