تعدد الاشكال لجين الاندوثيلين-1 مع التعبير الجيني للبين ابيضاضي-1 بيتا في النساء العراقيات المصابات بالعقم الخاضعات لبرنامج الاخصاب خارج الرحم

المؤلفون

  • Zainab Jalil Abdulkareem Al-Sadreen high school for distinguishing students, Ministry of Education, Baghdad, Iraq
  • أسماء محمد صالح المهيدي قسم علوم الحياة، كلية العلوم للبنات، جامعة بغداد، بغداد، العراق

DOI:

https://doi.org/10.21123/bsj.2024.9275

الكلمات المفتاحية:

جين الاندوثيلين-1، التعبير الجيني للاندوثيلين-1، جين البين ابيضاضين-1، النساء العراقيات المصابات بالعقم، برنامج الاخصاب خارج الرحم.

الملخص

تقبل بطانة الرحم هي المرحلة المحددة لنجاح العلاج ببرنامج أطفال الانابيب، يتم تنظيم غزو خلايا الأرومة الغاذية البشرية لبطانة الرحم من خلال العديد من العوامل مثل EDN1 و IL-1β. تهدف هذه الدراسة الى التحقق من العلاقة بين تعدد الاشكال والتعبير الجيني لجينات EDN1 و IL-1β وانغراس الجنين في النساء المصابات بالعقم الخاضعات لبرنامج الاخصاب خارج الرحم. تم جمع عينات الدم المحيطي في يوم الارجاع بعد ساعة من ارجاع الجنين. بعد اخذ الموافقة من 60 امرأة وتم تقسيمها الى مجموعتين وفقا لنتيجة انغراس الجنين، مجموعة فشل لديهن الانغراس شملت 35 امرأة، ومجوعة نجح لديهن الانغراس شملت 25 امرأة. كشفت نتائج تتابع تسلسل الحمض النووي عن وجود تغايرين وراثيين في جين EDN1، rs2070699 لم يظهر أي ارتباط بنتيجة انغراس الجنين في النساء المصابات بالعقم وفقا لاحتمالية فيشر، واظهر تواترا عاليا في مجموعتي الدراسة للطرز الوراثية GG و TT مقارنة بالطراز الوراثي GT. ويظهر التغاير No.7196T>G على الإكسون الثاني ان الطراز الوراثي TT كان الأعلى تكرارا في مجموعة النجاح، بينما الطراز الوراثي TG هو الأعلى تكرارا في مجموعة الفشل. نتائج التعبير الجيني لجين EDN1 و IL-1β لم تظهر أي اختلاف معنوي بين مجموعتي الدراسة، واظهر الارتباط بين EDN1 و IL-1β علاقة إيجابية معنوية. نستنتج، ان التغايرات الوراثية rs2070699 و No.7196T>G ليس لها تأثير على مستوى التعبير الجيني عند النساء المصابات بالعقم الخاضعات لبرنامج أطفال الانابيب. التعبير الجيني لجين EDN1 و IL-1β يمتلكان علاقة إيجابية مهمة في المرحلة الأصفرية وكلاهما يزداد التعبير عنه في النساء اللواتي لديهن انغراس جنيني ناجح.

المراجع

Daud N, Gustia K. In-Vitro Fertilizatiion (IVF) Concept According to Modern Medical. IJ-ARBSS. 2023; 13; 6: 1254-1260. http://dx.doi.org/10.6007/IJARBSS/v13-i6/17571.

Afnan MA, Rudin C, Conitzer V, Savulescu J, Mishra A, Liu Y, et al. Ethical implementation of artificial intelligence to select embryos in in vitro fertilization. In Proceedings of the 2021 AAAI/ACM Conference on AI, Ethics Soc. 2021; 316-326. https://doi.org/10.1145/3461702.3462589.

Karizbodagh MP, Rashidi B, Sahebkar A, Masoudifar A, Mirzaei H. Implantation window and angiogenesis. J Cell Biochem. 2017; 118(12): 4141-51. https://doi.org/10.1002/jcb.26088.

Hertig AT, Rock J, Adams EC. A description of 34 human ova within the first 17 days of development. Am J Anat. 1956; 98(3): 435-93. https://doi.org/10.1002/aja.1000980306.

Maia Bezerra NK, de Menezes Galvao AC, Martins Leite NE, Leão Barbalho Sant’anna A, de Medeiros Garcia Torres M, Galvao Pinto Coelho MC, et al. Success of in vitro fertilization and its association with the levels of psychophysiological stress before and during the treatment. Health Care Women Int. 2021; 42(4-6): 420-45. https://doi.org/10.1080/07399332.2020.1787415.

Singh M, Chaudhry P, Asselin E. Bridging endometrial receptivity and implantation: network of hormones, cytokines, and growth factors. J Endocrinol. 2011; 210(1): 5-14. https://doi.org/10.1530/joe-10-0461.

Hassab ZS, Almohaidi AMS, Alsaidi FS. Association between the Genetic Variation of LIF R Gene with Its Gene Expression and Implantation Outcomes of IVF-Iraqi Arab Females. J Pharm Negat. 2022; 13(4): 1665- 1671. http://dx.doi.org/10.47750/pnr.2022.13.04.230

Yousif RA, Almohaidi AMS, Al-Musawi BJ. Assessment of ITGB3 gene expression and hormonal status in infertile female undergoing an in vitro fertilization protocol. HIV Nursing. 2023; 23(1): 770-8.

Yousif RA, Almohaidi AM. Identification of ITGB3 Polymorphisms with implantation outcome during in vitro fertilization program. HIV Nursing. 2023; 23(1): 257-64. https://doi.org/10.31838/hiv23.01.42.

Mirza SF, Saeed RH, Almohaidi AMS, Al-Janabi IJ. Evaluation mucin 1 polymorphism and expression with infertility in Iraqi females. Res Mil. 2022; 14; 12(2): 6916-27.

Mihanfar A, Sadigh AR, Fattahi A, Latifi Z, Hasanzadeh‐Moghadam M, Samadi M, et al. Endothelins and their receptors in embryo implantation. J Cell Biochem. 2019; 120(9): 14274-84. https://doi.org/10.1002/jcb.28983.

Mubarak HJ, Ahmed SA. Histomorphometric and endothelin-1 immunohistochemical study of human placental villi correlated with umbilical cord coiling index. Iraqi JMS. 2017; 15 (2): 198-205.

Khidhir SM, Mahmud AM, Maulood IM. Association of Endothelin-I and A symmetric Dimethylarginine Levels with Insulin Resistance in Type-2 Diabetes Mellitus Patients. Baghdad Sci J. 2022; 19(1): 0055. http://dx.doi.org/10.21123/bsj.2022.19.1.0055.

Farhan TM. Endothelin-1 Expression in Placental Tissue Vasculature in Normal Vaginal Delivery and Cesarean Sections. Muthanna Med J. 2019; 6(1): 26-36.

Arinami T, Ishikawa M, Inoue A, Yanagisawa M, Masaki T, Yoshida MC, et al. Chromosomal assignments of the human endothelin family genes: the endothelin-1 gene (EDN1) to 6p23-p24, the endothelin-2 gene (EDN2) to 1p34, and the endothelin-3 gene (EDN3) to 20q13. 2-q13. 3. Am J Hum Genet. 1991; 48(5): 990.

National Center for Biotechnology Information. National Library of Medicine. EDN1 endothelin 1 - Homo sapiens (human).. (Accessed: 01 March 2023).

Mashkina EV, Kovalenko KA, Miktadova AV, Shkurat MA. Association of Gene Polymorphisms of Antioxidants with Reproductive Losses. Russ J Genet. 2020; 56: 354-62. https://doi.org/10.1186/1741-7015-11-154.

Flores JA. Gene expression of endothelin-1 in the porcine ovary: follicular development. Biol Reprod. 2000; 63(5): 1377-82. https://doi.org/10.1093/biolreprod/63.5.1377.

Apa R, Miceli F, Feo DD, Pierro E, Ayala G, Mancuso S, et al. Endothelin‐1: expression and role in human corpus luteum. Am J Reprod Immunol. 1998; 40(5): 370-6. https://doi.org/10.1111/j.1600-0897.1998.tb00068.x.

Riley SC, Findlay JK, Salamonsen LA. Endothelin-1 and endothelin receptors are present in the sheep uterus and conceptus at implantation. J Endocrinol. 1995; 147(2): 235-44. https://doi.org/10.1677/joe.0.1470235.

Inoue A, Yanagisawa M, Takuwa Y, Mitsui Y, Kobayashi M, Masaki T. The human preproendothelin-1 gene: complete nucleotide sequence and regulation of expression. J Biol Chem. 1989; 264(25): 14954-9. https://doi.org/10.1016/S0021-9258(18)63795-0.

Bulun SE. Steroids, cytokines, and implantation. Endocrinology. 2017; 158(6): 1575-6. https://doi.org/10.1210/en.2017-00407.

Telford JL, Macchia G, Massone A, Carinci V, Palla E, Melli M. The murine interleukin 1β gene: structure and evolution. Nucleic Acids Res. 1986; 14(24): 9955-63. https://doi.org/10.1093/nar/14.24.9955.

National Center for Biotechnology Information. National Library of Medicine. IL1B interleukin 1 beta- Homo sapiens (human). (Accessed: 01 March 2023).

Fontana VA, Sanchez M, Cebral E, Calvo JC. Interleukin-1β regulates metalloproteinase activity and leptin secretion in a cytotrophoblast model. Biocell. 2010 34(1): 37-43. https://doi.org/10.32604/BIOCELL.2010.34.037

Rébé C, Ghiringhelli F. Interleukin-1β and cancer. Cancers. 2020; 12(7): 1791. https://doi.org/10.3390/cancers12071791.

Sharma S, Godbole G, Modi D. Decidual control of trophoblast invasion. Am J Reprod Immunol. 2016; 75(3): 34150. https://doi.org/10.1111/aji.12466.

Schmittgen TD, Livak KJ. Analyzing real-time PCR data by the comparative CT method. Nat Protoc. 2008; 3(6): 1101-8. https://doi.org/10.1038/nprot.2008.73

Bińkowski J, Miks S. Gene-Calc [Computer software]. 2018. may, 2023.

Mastrogiannis DS, O'Brien WF, Krammer J, Benoit R. Potential role of endothelin-1 in normal and hypertensive pregnancies. J Obstet Gynaecol Res. 1991; 165(6) :1711-6. https://doi.org/10.1016/0002-9378(91)90020-R

Merviel P, Lourdel E, Cabry R, Boulard V, Brzakowski M, Demailly P, et al. Physiopathology of human embryonic implantation: clinical incidences. Folia Histochem. Cytobiol. 2009; 47(5): 25-34. https://doi.org/10.2478/v10042-009-0058-3

Yang H, Pang H, Miao C. Ovarian IL-1α and IL-1β levels are associated with primary ovarian insufficiency. Int J Clin Exp Path. 2018; 11(9): 4711.

Zhu X, Niu Z, Ye Y, Xia L, Chen Q, Feng Y. Endometrium cytokine profiles are altered following ovarian stimulation but almost not in subsequent hormone replacement cycles. Cytokine. 2019; 114: 6-10. https://doi.org/10.1016/j.cyto.2018.11.002.

Liang PY, Diao LH, Huang CY, Lian RC, Chen X, Li GG, et al. The pro-inflammatory and anti-inflammatory cytokine profile in peripheral blood of women with recurrent implantation failure. Reprod Biomed Online. 2015; 31(6): 823-6. https://doi.org/10.1016/j.rbmo.2015.08.009.

Boomsma CM, Kavelaars A, Eijkemans MJ, Lentjes EG, Fauser BC, Heijnen CJ, et al. Endometrial secretion analysis identifies a cytokine profile predictive of pregnancy in IVF. Hum Reprod. 2009; 24(6): 1427-35. https://doi.org/10.1093/humrep/dep011.

Rikimaru T, Awano S, Mineoka T, Yoshida A, Ansai T, Takehara T. Relationship between endothelin-1 and interleukin-1β in inflamed periodontal tissues. Biomed Res. 2009; 30(6): 349-55. https://doi.org/10.2220/biomedres.30.349.

Lin Z, Kubota T, Masuda M, Aso T. Role of nitric oxide synthase in release of endothelin from cultured human endometrial cells. Eur J Endocrinol. 1998; 138(4): 467-71. https://doi.org/10.1530/eje.0.1380467.

التنزيلات

إصدار

القسم

article

كيفية الاقتباس

1.
تعدد الاشكال لجين الاندوثيلين-1 مع التعبير الجيني للبين ابيضاضي-1 بيتا في النساء العراقيات المصابات بالعقم الخاضعات لبرنامج الاخصاب خارج الرحم. Baghdad Sci.J [انترنت]. [وثق 27 يوليو، 2024];22(2). موجود في: https://bsj.uobaghdad.edu.iq/index.php/BSJ/article/view/9275