تأثير المضاد الجرثومي لدقائق الفضة النانوية صديقة البيئة المصنعة من خالصة تمر النخيل العراقي ضد البكتريا السالبة لصبغة كرام والمكونة للغشاء الحيوي
محتوى المقالة الرئيسي
الملخص
يعد تصنيع دقائق الفضة النانوية بواسطة التمر بالطريقة الخضراء او النباتية واستخدامه كمضاد بكتيري. في الوقت الحاضر حصلت
هذه الطريقة على اهتمام الباحثين النها امينة وغير سامة وقليلة التكلفة وصديقة للبيئة. تشتمل البكتريا المكونة للغشاء الحيوي والموجودة في
الحليب المحلي المتوفر باالسواق على خطورة عالية على صحة المجتمع بسبب ان اغلب البكتريا المكونة للغشاء الحيوي تكون مقاومة
للمضادات الحياتية. الهدف من الدراسة هو القضاء على البكتريا المكونة للغشاء الحيوي والموجودة بالحليب المحلي باستخدام عالجا بديال
بتحضير دقائق الفضة النانوية من التمر. حيث كشفت قابلية البكتريا المعزولة من الحليب المحلي على تكوين الغشاء الحيوي باستخدام طريقة
صبغة الكونغو الحمراء. حضرت دقائق الفضة النانوية باستخدام خالصة التمر. حيث تم فحص دقائق الفضة المصنوعة بواسطة جهاز االشعة
فوق البنفسجية ومجهر القوة الذرية. تم تقييم فاعلية دقائق الفضة المصنعة المضادة للبكتريا بواسطة طريق االنتشار الحفر باألكار. اظهرت
النتائج ان البكتريا المعزولة من الحليب والمنتجة للغشاء الحيوي هي االشرشيا القولونيةcoli. E بعدد 3 وال pneumoniae Klebsiella
بعدد 5 عزالت ضمن العزالت السالبة لصبغة غرام. حجم النانو المحضر كان 35 نانوميتر حيث تم الكشف عن تكونه بواسطة التغيير اللوني
للمستخلص النباتي من اللون االصفر الى البني وقمة امتصاص عند 410 نانوميتر. كذلك اظهرت النتائج عن الفاعلية العالية لدقائق الفضة في
القضاء على البكتريا السالبة لصبغة غرام و المنتجة للغشاء الحيوي. نستنتج من هذه الدراسة ان دقائق الفضة المصنعة من مستخلص التمر ذو
كفاءة عالية في القضاء على البكتريا السالبة لصبغة غرام والمنتجة للغشاء الحيوي.
Received 17/6/2019
Accepted 5/1/2020
Published Online First 30/4/2021
تفاصيل المقالة
هذا العمل مرخص بموجب Creative Commons Attribution 4.0 International License.
كيفية الاقتباس
المراجع
Anselmo AC, Mitragotri S. A review of clinical
translation of inorganic nanoparticles. The AAPS
journal. 2015;17(5):1041-54.
Abinaya C, Mayandi J, Osborne J, Frost M, Ekstrum
C, Pearce JM. Inhibition of growth of S. epidermidis
by hydrothermally synthesized ZnO nanoplates. Mat
Res Exp. 2017;4(7):075401.
Anandalakshmi K, Venugobal J, Ramasamy V.
Characterization of silver nanoparticles by green
synthesis method using Pedalium murex leaf extract
and their antibacterial activity. Appl. Nanosci.
;6(3):399-408.
Prakash P, Gnanaprakasam P, Emmanuel R,
Arokiyaraj S, Saravanan M. Green synthesis of silver
nanoparticles from leaf extract of Mimusops elengi,
Linn. for enhanced antibacterial activity against multi
drug resistant clinical isolates. Colloids Surf B
Biointerfaces. 2013;108:255-9.
Farhadi S, Ajerloo B, Mohammadi A. Green
biosynthesis of spherical silver nanoparticles by using
date palm (phoenix dactylifera) fruit extract and study
of their antibacterial and catalytic activities. ACTA
CHIM SLOV. 2017;64(1):129-43.
Tengberg M. Beginnings and early history of date
palm garden cultivation in the Middle East. J ARID
ENVIRON. J of Ari Env.. 2012;86:139-47.
Jahromi MAF, Moien MR, Mollaei M. Volatile
Constituents and Antioxidant Activity of Spathes
from Five Un-common Varieties of Phoenix
dactylifera L. Trends Pharmacol Sci. 2018;4(4).
Neethirajan S, Clond MA, Vogt A. Medical
biofilms—nanotechnology approaches. J. Biomed.
Nanotech. 2014;10(10):2806-27.
Marchand S, De Block J, De Jonghe V, Coorevits A,
Heyndrickx M, Herman L. Biofilm formation in milk
production and processing environments; influence
on milk quality and safety. Comp Rev Food Sci F.
;11(2):133-47.
Guła G, Dorotkiewicz-Jach A, Korzekwa K, Valvano
MA, Drulis-Kawa Z. Complex Signaling Networks Controlling Dynamic Molecular Changes in
Pseudomonas aeruginosa Biofilm. Curr Med Chem.
Anes J, Sivasankaran SK, Muthappa DM, Fanning S,
Srikumar S. Exposure to Sub-inhibitory
Concentrations of the Chemosensitizer 1-(1-
Naphthylmethyl)-Piperazine Creates Membrane
Destabilization in Multi-Drug Resistant Klebsiella
pneumoniae. Front Microbiol. 2019;10(92).
MacFaddin JF. Biochemical Tests for Identification
of Medical Bacteria. 3rd ed: Williams and Wilkins.
Baltimore, USA; 2000.
Freeman D, Falkiner F, Keane C. New method for
detecting slime production by coagulase negative
staphylococci. J Clin Pathol. 1989;42(8):872-4.
Karthik C, Radha K. Biosynthesis and
characterization of silver nanoparticles using
Enterobacter aerogenes: a kinetic approach. Dig J
Nanomater Biostruct. 2012;7:1007-14.
Rao A, Schoenenberger M, Gnecco E, Glatzel T,
Meyer E, Brändlin D, et al., editors. Characterization
of nanoparticles using atomic force microscopy.
Journal of Physics: Conference Series; 2007: IOP
Publishing. pp: 971-976.
Bose S, Khodke M, Basak S, Mallick S. Detection of
biofilm producing staphylococci: need of the hour. J
Clin Diagn Res.2009;3(6):1915-20.
Ksontini H, Kachouri F, Hamdi M. Dairy biofilm:
impact of microbial community on raw milk quality.
J Food Quality. 2013;36(4):282-90.
Al-Azawi IH, Al-Hamadani AH, Hasson SO.
Association between Biofilm Formation and
Susceptibility to Antibiotics in Staphylococcus
Lentus Isolated from Urinary Catheterized Patients.
Nano Biomed Eng. 2018;10(2):97-103.
Hasson SO. Phenotypic and Genotypic Detection of
Biofilm Formation Pseudomonas oryzihabitance and
Susceptibility to Antibiotics. Nano Biomed Eng.
;11(1):11-7.
CLSI. Performance standards for antimicrobial
susceptibility testing. M100, Clinical and Laboratory
Standards Institute, Wayne, PA. 2017.
Ebrahimi A, Hemati M, Shabanpour Z, Dehkordi SH,
Bahadoran S, Lotfalian S, et al. Effects of
benzalkonium chloride on planktonic growth and
biofilm formation by animal bacterial pathogens.
Jundishapur J Microbiol. 2015;8(2).
Hasson SO, Al-Awady MJ, Al-Hamadani AH, AlAzawi IH, Ali AI. Boosting Antimicrobial Activity of
Imipenem in Combination with Silver Nanoparticles
towards S. fonticola and Pantoea sp. Nano Biomed
Eng. 2019;11(2):200-14.
Bodle KB. Effects of triclosan exposure on
nitrification in activated sludge, biofilms, and pure
cultures of nitrifying bacteria: Montana State
University-Bozeman, College of Engineering; 2016.
Wang S, Zhou C, Ren B, Li X, Weir MD, Masri RM,
et al. Formation of persisters in Streptococcus mutans
biofilms induced by antibacterial dental monomer. J
Mater Sci Mater Med 2017;28(11):178.
Band VI, Weiss DS. Heteroresistance: A cause of
unexplained antibiotic treatment failure? PLoS
pathogens. 2019;15(6):e1007726.
Kuppusamy P, Yusoff MM, Maniam GP, Govindan
N. Biosynthesis of metallic nanoparticles using plant
derivatives and their new avenues in pharmacological
applications–An updated report. Saudi Pharm J.
;24(4):473-84.
Kumar B, Smita K, Cumbal L, Angulo Y. Fabrication
of silver nanoplates using Nephelium lappaceum
(Rambutan) peel: a sustainable approach. J. Mol. Liq.
;211:476-80.
Shahverdi AR, Minaeian S, Shahverdi HR, Jamalifar
H, Nohi A-A. Rapid synthesis of silver nanoparticles
using culture supernatants of Enterobacteria: a novel
biological approach. Process Biochem.
;42(5):919-23.
Al-Awady MJ, Balakit AA, Al-Musawi S, Alsultani
MJ, Kamil A, Alabbasi M. Investigation of AntiMRSA and Anticancer Activity of Eco-Friendly
Synthesized Silver Nanoparticles from Palm Dates
Extract. Nano Biomed. Eng. 2019;11(2).
Mathur T, Singhal S, Khan S, Upadhyay D, Fatma T,
Rattan A. Detection of biofilm formation among the
clinical isolates of staphylococci: an evaluation of
three different screening methods. Indian J Med
Microbiol. 2006;24(1):25.
Guzmán MG, Dille J, Godet S. Synthesis of silver
nanoparticles by chemical reduction method and their
antibacterial activity. Int J Chem Biomol Eng.
;2(3):104-11.
Hasson SO, Al-Awady, M.J., Al-Hamadani, A.H. and
Ibtisam Habeeb Al-Azawi. . Boosting Antimicrobial
Activity of Imipenem in Combination with Silver
Nanoparticles towards S. fonticola and Pantoea sp.
Nano Biomed Eng. 2019;under press.
Kvitek L, Panáček A, Soukupova J, Kolář M,
Večeřová R, Prucek R, et al. Effect of surfactants and
polymers on stability and antibacterial activity of
silver nanoparticles (NPs). J Phsc Chem C.
;112(15):5825-34.
Norouzzadeh Helali Z, Esmailzadeh M. A
comparative study of antibacterial effects of
mouthwashes containing Ag/ZnO or ZnO
nanoparticles with chlorhexidine and investigation of
their cytotoxicity. Nanomed. J. 2018;5(2):102-10.
Mahltig B, Grethe T, Haase H. Antimicrobial
Coatings Obtained by Sol-Gel Method. Handbook of
Sol-Gel Science and Technology: Processing,
Characterization and Applications. 2018:3461-87.
Vijayan SR, Santhiyagu P, Ramasamy R, Arivalagan
P, Kumar G, Ethiraj K, et al. Seaweeds: A resource
for marine bionanotechnology. Enzyme Microb
Technol. 2016;95:45-57.