سمية فيروس تعدد التعرق النووي والمبيدات النباتية والاصطناعية وتأثيرها على معدل وفيات Crocidolomia binotalis (Zeller)
DOI:
https://doi.org/10.21123/bsj.2022.6154الكلمات المفتاحية:
Ijen Crater، NPV، الأفضلية، التوصية، والمستدامةالملخص
Crocidolomia binotalis (Cb) (Zeller) هي واحدة من الآفات الرئيسية للملفوف التي يصعب على المزارعين السيطرة عليها في منطقة بركان ايجن في إندونيسيا. يتزايد الطلب على الملفوف في إندونيسيا كل عام، لذلك يتم بذل جهود مكثفة باستمرار. يستخدم المزارعون بشكل مكثف مبيدات الآفات الاصطناعية كعنصر تحكم أساسي في Cb. ان الغرض من هذه الدراسة هو فحص العديد من عوامل التحكم التي يمكن استخدامها كبديل لمبيدات الآفات الاصطناعية. بعد ذلك، تقديم توصيات إلى مزارعي ايجن Crater للمساهمة في الحد من استخدام المبيدات الحشرية الاصطناعية. اعتمد المبيد الحيوي المستخدم على سلالات فيروس تعدد التعرق النووي من Spodoptera litura (SlNPV))) و Helicoverpa armigera (HaNPV))) ، ومبيدات الآفات النباتية ، ومبيدات الآفات الاصطناعية كعلاج مقارن. تم الحصول على عزلات SlNPv و HaNPV من المعهد الإندونيسي لأبحاث التحلية ومحاصيل الألياف. تأتي تركيبات مبيدات الآفات النباتية من مزيج من Azadiracta indica وAglaia odorata و Ageratum conyzoides والتي تم تجفيفها لمدة أسبوع وتم اقتراحها لتكوين دقيق. بعد ذلك، تم استخلاصه باستخدام 96٪ مذيب إيثانول، 0.5٪ بين 90 باستخدام مبخر دوار عند درجة حرارة 40 درجة مئوية. بالنسبة لمبيدات الآفات الاصطناعية، تستخدم المعالجة باستخدام المكون الفعال بيرميثرين 20 مجم L-1. تمت إعادة ترشيح cb الذي تم جمعه من الحقل في طبق بتري عن طريق توفير علف اصطناعي تم نقعه بهذه المادة لمدة 5 دقائق. تم العثور على أعلى نتائج اختبار الوفيات في صيغة مبيدات الآفات النباتية بقيمة 100٪ في 72 ساعة. تميل الوفيات في SlNPV و HaNPV إلى الاستقرار بحد أقصى 72.02٪. يمكن أن تكون نتائج اختبار الوفيات في المختبر توصية بمكافحة بديلة لآفات Cb في نباتات الملفوف في الحقل. في هذه الحالة، يُعد هذا جهدًا لتقليل اعتماد المزارعين على استخدام مبيدات الآفات الاصطناعية.
Received 23/3/2021
Accepted 13/2/2022
Published Online First 20/7/2022
المراجع
Building a common vision for sustainable food and agriculture; Principles And Approaches.Food And Agriculture Organization Of The United Nations. FAO.Rome 2014.
Wojtkowski P. Agroecology; Simplified and Explained.Pittsfield, Springer.MA, USA: 2019; 2-14p.
Gliessman SR,E Engles. The Ecology of Sustainable Food Systems. CRC Press: Newyork ; 2015: 3-21p.
Weinberger K, Srinivasan R. Farmers’ management of cabbage and cauliflower pests in India and their approaches to crop protection. J Asia Pac Entomol. 2009; 12(4): 253–9.
Patra S, Ganguly P, Barik SR, Goon A, Mandal J, Samanta A. Persistence behaviour and safety risk evaluation of pyridalyl in tomato and cabbage. Food Chem. 2020; 309: 1-10.
Alhasan BK, Sabr SH. Influence of the Surrounding Plants by Rapeseed Field on Population Density of Cabbage Aphid (Brevicoryne brassicae L.) and its Biological Enemies. Baghdad Sci J. 2010; 7(1): 1-8.
Al-Rawy M, Abdulhay HS. Study The Predation Efficiency of Chrysoperla carnea (Stephens)(Neuroptera :Chrysopidae) Larvae in Controlling Nymphs and Adults of Cabbage Aphid Brevicoryne brassicae(L.) (Homoptera :Aphididae). Baghdad Sci J. 2012; 9(3): 424-430.
Choi SW, Kim SS. Six new records of Crambidae (Lepidoptera) from Korea. J Asia Pac Biodivers. 2019; 12(3): 433–7. https://doi.org/10.1016/j.japb.2019.03.009.
Tadle FPJ. Choice of feeding sites, growth and survival by Crocidolomia pavonana. Thesis , University of Queensland ; 2016: 2-7P.
Slimi C, Prost M, Cerf M, Prost L. Exchanges among farmers’ collectives in support of sustainable agriculture: From review to reconceptualization. J Rural Stud. 2021; 1-11.
Alfarisy FK. Inspecting resources management through model residue pesticide on soil and crop quality. Prosiding Seminar Nasional Perteta, Institut Pertanian STIPER, Yogyakarta – Indonesia, 29-31 Agustus 2018 : 90-94
Alfarisy FK, Petrina JM, Andriyani I, Adibowo C. Typology of Agricultural Upstream Area of Watershed on Intensive Fertilizer Behaviour on Conservation of Natural Resources in Bedadung. In: IOP Conf Ser Earth Environ Sci. 2020: 1-15.
Alfarisy FK, Andriyani I, Adibowo C. Evaluation of water quality due to the use of intensive fertilizer on farmer level in the upstream of Bedadung Jember Watershed, East Java, Indonesia. J Degrade Min Land Manage. 2020; 7(4): 2502–2458.
Bass C, Jones CM. Editorial overview: Pests and resistance: Resistance to pesticides inarthropod crop pests and disease vectors: mechanisms, models and tools. Curr Opin Insect Sci. 2018; 27
Lengai GMW, Muthomi JW, Mbega ER. Phytochemical activity and role of botanical pesticides in pest management for sustainable agricultural crop production. Scientific African. 2020; 7: 1-13.
Kakoki S, Kamimuro T, Tsuda K, Sakamaki Y. Effect of partial pesticide spraying on the number of major pests and damage to new shoots of tea plants. J Asia Pac Entomol. 2019; 22(3): 826–37.
Tjahjadi B, Soewarno N, Mustikaningtiyas F. Good corporate governance and corporate sustainability performance in Indonesia: A triple bottom line approach. Heliyon. 2021; 7(3): 1-11.
Nawaz A, Ali H, Sufyan M, Gogi MD, Arif MJ, Ranjha MH, et al. Comparative bio-efficacy of nuclear polyhedrosis virus (NPV) and Spinosad against American bollwormm, Helicoverpa armigera (Hubner). Rev Bras Entomol. 2019; 63(4): 277–282.
Kitajima M, Abe T, Miyano-Kurosaki N, Taniguchi M, Nakayama T, Takaku H. Induction of natural killer cell-dependent antitumor immunity by the autographa californica multiple nuclear polyhedrosis virus. Mol Ther. 2008; 16(2): 261–268.
Oberemok V V., Laikova K V., Zaitsev AS, Gushchin VA, Skorokhod OA. The RING for gypsy moth control: Topical application of fragment of its nuclear polyhedrosis virus anti-apoptosis gene as insecticide. Pestic Biochem Phys. 2016; 131: 32–39.
Kerebba N, Oyedeji AO, Byamukama R, Kuria SK. Pesticidal activity of Tithonia diversifolia (Hemsl.) A. Gray and Tephrosia vogelii (Hook f.); phytochemical isolation and characterization: A review. S Afr J Bot. 2019; 121: 366–376.
Yudhita M R, KusumahY M. Pengaruh Instar Larva Hyposidra talaca Walker dan Hari Panen Polihedra Pascainokulasi terhadap Produksi Polihedra Nucleopolyhedrovirus. Prosiding seminar nasional perlindungan tanaman. Bogor: IPB University; 2015: 59-69.
Hoesain M, Prastowo S, Pradana AP. Combination of plant growth-promoting bacteria and botanical pesticide increases organic red rice yield and reduces the Leptocorisa acuta population. Biodiversitas. 2021; 22(4): 1686–1694.
Radhika S, Sahayaraj K, Senthil-Nathan S, Hunter WB. Individual and synergist activities of monocrotophos with neem based pesticide, Vijayneem against Spodoptera litura Fab. Physiol Mol Plant Pathol. 2018; 101: 54–68.
Kostić M, Popović Z, Brkić D, Milanović S, Sivčev I, Stanković S. Larvicidal and antifeedant activity of some plant-derived compounds to Lymantria dispar L. (Lepidoptera: Limantriidae). Bioresour Technol. 2008; 99(16): 7897–7901.
Neto Bandeira G, Augusto Gomes da Camara C, Martins de Moraes M, Barros R, Muhammad S, Akhtar Y. Insecticidal activity of Muntingia calabura extracts against larvae and pupae of diamondback, Plutella xylostella (Lepidoptera, Plutellidae). J King Saud Univ Sci. 2013; 25(1): 83–89.
Charleston DS, Kfir R, Dicke M, Vet LEM. Impact of botanical extracts derived from Melia azedarach and Azadirachta indica on populations of Plutella xylostella and its natural enemies: A field test of laboratory findings. Biol Control. 2006; 39(1): 105–114.
Yang H, Piao X, Zhang L, Song S, Xu Y. Ginsenosides from the stems and leaves of Panax ginseng show antifeedant activity against Plutella xylostella (Linnaeus). Ind Crops Prod. 2018; 124(2888): 412–417.
Kannan M, Vijayaraghavan C, Jayaprakash SA, Uthamsamy S. Studies on the biology and toxicity of newer insecticide molecules on cabbagehead caterpillar , Crocidolomia binotalis ( Zeller ) ( Lepidoptera : Pyralidae ) in India. 6th Int Work Manag Diamondback Moth Other Crucif Pests. 2008 Oct: 31–7.
Campos EVR, Proença PLF, Oliveira JL, Bakshi M, Abhilash PC, Fraceto LF. Use of botanical insecticides for sustainable agriculture: Future perspectives. Ecol Indic. 2019; 105: 483–495.
Senthil Nathan S, Young Choi M, Yul Seo H, Hoon Paik C, Kalaivani K, Duk Kim J. Effect of azadirachtin on acetylcholinesterase (AChE) activity and histology of the brown planthopper Nilaparvata lugens (Stål). Ecotoxicol Environ Saf. 2008; 70(2): 244–250.
Oberemok V V, Laikova K V, Zaitsev AS, Gushchin VA, Skorokhod OA. Data for increase of Lymantria dispar male survival after topical application of single-stranded RING domain fragment of IAP-3 gene of its nuclear polyhedrosis virus. Data Brief. 2016; 7: 514–517.
Yodsaoue O, Sonprasit J, Karalai C, Ponglimanont C, Tewtrakul S, Chantrapromma S. Diterpenoids and triterpenoids with potential anti-inflammatory activity from the leaves of Aglaia odorata. Phytochemistry. 2012; 76: 83–91.
Nugroho BW, Edrada RA, Wray V, Witte L, Bringmann G, Gehling M, et al. An insecticidal rocaglamide derivatives and related compounds from Aglaia odorata (Meliaceae). Phytochemistry. 1999; 51(3): 367–76.
Zhang H, Song ZJ, Chen WQ, Wu XZ, Xu HH. Chemical constituents from Aglaia odorata Lour. Biochem Syst Ecol. 2012; 41(14027): 35–40:
Ndacnou M, Pantaleon A, Saha Tchinda J bosco, Ngonkeu Mangapche EL, Keumedjio F, Begoude Boyoguemo D. Phytochemical study and anti-oomycete activity of Ageratum conyzoides Linnaeus. Ind Crops Prod. 2020; 153: 1-12.
Rioba NB, Stevenson PC. Ageratum conyzoides L. for the management of pests and diseases by small holder farmers. Ind Crops Prod. 2017 June; 110 : 22–29.
Chen YW, Wu CP, Wu TC, Wu YL. Analyses of the transcriptome of Bombyx mori cells infected with either BmNPV or AcMNPV. J Asia Pac Entomol. 2018; 21(1): 37–45. https://doi.org/10.1016/j.aspen.2017.10.009.
التنزيلات
منشور
إصدار
القسم
الرخصة
الحقوق الفكرية (c) 2022 مجلة بغداد للعلوم
هذا العمل مرخص بموجب Creative Commons Attribution 4.0 International License.