الملف الكيميائي النباتي، مضادات الأكسدة، مثبط الإنزيم ونشاط السمية الحادة من Astragalus bruguieri

المؤلفون

  • Ahmed Aj Jabbar قسم تقنيات المختبرات الطبية، كلية أربيل للتقنيات الصحية، جامعة بوليتكنيك أربيل، أربيل، 44001، العراق https://orcid.org/0000-0001-9689-4018
  • Kamaran Kaiani Abdulrahman قسم الكيمياء, كلية العلوم, جامعة صلاح الدين – أربيل, 44001، العراق. https://orcid.org/0000-0002-5982-2928
  • Parween Abdulsamad قسم الكيمياء, كلية التربية, جامعة صلاح الدين – أربيل, 44001، العراق. https://orcid.org/0000-0002-2410-4889
  • Sharoukh Mojarrad قسم العلوم الحياة، كلية التربية، جامعة صلاح الدين – أربيل, 44001، العراق.
  • Güldal Mehmetçik قسم الكيمياء الحيوية الطبية، كلية الطب، جامعة قبرص الدولية، مرسين 10، تركيا https://orcid.org/0000-0002-3075-0713
  • Abdullah Sh Sardar قسم العلوم الحياة، كلية التربية، جامعة صلاح الدين – أربيل, 44001، العراق. https://orcid.org/0000-0003-2964-4451

DOI:

https://doi.org/10.21123/bsj.2022.6769

الكلمات المفتاحية:

السمية الحادة، مضادات الأكسدة، استراغالوس بروغيري، مثبطات الإنزيم، كيمياء النبات

الملخص

 تم استخدام النباتات الطبية (أنواع استراغالوس) تقليديًا كمضاد للالتهابات ومضاد للأكسدة ومضاد لمرضى السكر. يبحث البحث الحالي في الكيمياء النباتية وبعض النشاط البيولوجي لمستخلص الميثانول لأجزاء مختلفة من Astragalus bruguieri Bioss.، وهو نبات طبي بري ينمو في جبل سفين، أربيل، العراق. تم تحليل المستخلصات الميثانولية للنبات A. bruguieri لمعرفة محتويات الفينول والفلافونويد والسابونين. تم تحليل نشاط مضادات الأكسدة في المختبر بواسطة مقايسات 2،2-diphenyl-1-picrylhydrazyl (DPPH) و2،2'azino-bis (3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid) (ABTS). علاوة على ذلك، تم فحص المستخلصات النباتية لمعرفة النشاط المثبط للإنزيم المختبري والسمية شبه الحادة في الجسم الحي. أظهرت النتائج أعلى محتوى إجمالي من الفينول (28.83، 20.62 مجم GAEs / جم) في الأوراق والجذور على التوالي. بينما وجد أعلى محتوى إجمالى من الفلافونويد (50.08، 44.01 مجم REs / جم) في الأجزاء الهوائية والأوراق على التوالي. كان إجمالي الصابونين أكثر انتشارًا (25.33، 23.18 مجم من مستخلص GAEs / جم) في الجذور والأجزاء الهوائية، على التوالي. أظهر قياس نشاط مضادات الأكسدة في المختبر بواسطة مقايسة (DPPH) أن الأوراق كجزء متفوق في هذا النشاط (42.19   mg مستخلص TEs / g)، بينما أشار تقييم مضادات الأكسدة بواسطة مقايسة (ABTS) إلى أن الجذور هي الجزء الأكثر نشاطًا (86.90   mg TEs / مستخلص ز). تم العثور على α-glucosidase وα-amylase لتكون 0.45-0.67 و1.2-1.8 مللي مول ACAEs / جم على التوالي. أشار اختبار السمية الفموية الحادة إلى سلامة جرعة 600 مجم / كجم لأجزاء مختلفة من A. bruguieri على الجرذان البيضاء دون حدوث خلل سلوكي أو الموت. تعتبر الدراسة الحالية أول تقرير عن A. bruguieri كمصدر جديد محتمل للمواد المتوافقة حيويًا للعديد من المنتجات الصناعية.

المراجع

Atanasov AG, Waltenberger B, Pferschy-Wenzig EM, Linder T, Wawrosch C, Uhrin P, et al. Discovery and resupply of pharmacologically active plant-derived natural products: A review. Discovery and resupply of pharmacologically active plant derived natural products: a review. Biotechnol Adv. 2015; 33(8): 1582–614. https://doi.org/10.1016/j.biotechadv.2015.08.001

Jabbar AA. Onosma mutabilis: Phytochemical composition, antioxidant, cytotoxicity, and acute oral toxicity. Food Sci Nutr 2021; 9(10): 5755–5764. https://doi.org/10.1002/fsn3.2544

Al-Muwaly KY, Al-Flayeh KA, Ali A. Antioxidant and free radical scavenging effects of Iraqi sumac (Rhus coriaria L). Baghdad Sci J. 2013; 10(3): 921–33. https://doi.org/10.21123/bsj.2013.10.3.921-933

Taqi RA. Phenolic Content and Antioxidant, Antibacterial Activities of Ethanolic Extract from Lemon Balm and Oregano Plants. Baghdad Sci J. 2014; 11(1): 103–10. https://doi.org/10.21123/bsj.2014.11.1.103-110

AL-Muhammadi QN. Physiological study to investigate the activity of an aqueous extract of Cinnamomum cassiabark on the blood glucose levels in healthy and diabetic rats induced by streptozotocin (stz). Baghdad Sci J. 2016; 13(4): 681-693. https://doi.org/10.21123/bsj.2016.13.4.0681

Hwang GH, Jeon YJ, Han HJ, et al. Protective effect of butylated hydroxylanisole against hydrogen peroxide-induced apoptosis in primary cultured mouse hepatocytes. J Vet Sci. 2015;16(1):17-23. https://doi.org/doi:10.4142/jvs.2015.16.1.17

Sasaki YF, Kawaguchi S, Kamaya A, Ohshita M, Kabasawa K, Iwama K, et al. The comet assay with 8 mouse organs: results with 39 currently used food additives. Mutat Res. 2002; 519(1–2): 103–19. https://doi.org/10.1016/S1383-5718(02)00128-6

Bao W-R, Li Z-P, Zhang Q-W, Li L-F, Liu H-B, Ma D-L, et al. Astragalus Polysaccharide RAP Selectively Attenuates Paclitaxel-Induced Cytotoxicity Toward RAW 264.7 Cells by Reversing Cell Cycle Arrest and Apoptosis. Front Pharmacol. 2019; 9: 1580. https://doi: 10.3389/fphar.2018.01580

Graziani V, Esposito A, Scognamiglio M, Chambery A, Russo R, Ciardiello F, et al. Spectroscopic Characterization and Cytotoxicity Assessment towards Human Colon Cancer Cell Lines of Acylated Cycloartane Glycosides from Astragalus boeticus L. Molecules. 2019; 24(9) 1725-1542. https://doi.org/ 10.3390/molecules24091725.

Clemens KK, O’Regan N, Rhee JJ. Diabetes Management in Older Adults with Chronic Kidney Disease. Curr Diab Rep. 2019; 19(3): 11-29. https://doi.org/10.1007/s11892-019-1128-3

Takahashi M, Ozaki M, Kang M-I, Sasaki H, Fukazawa M, Iwakami T, et al. Effects of Meal Timing on Postprandial Glucose Metabolism and Blood Metabolites in Healthy Adults. Nutrients. 2018 Nov; 10(11): 1763-1774. https://doi.org/ 10.3390/nu10111763.

Telagari M, Hullatti K. In-vitro α-amylase and α-glucosidase inhibitory activity of Adiantum caudatum Linn. and Celosia argentea Linn. extracts and fractions. Indian J Pharmacol. 2015; 47(4): 425–9. https://doi.org/10.4103/0253-7613.161270

Kotowaroo MI, Mahomoodally MF, Gurib-Fakim A, Subratty AH. Screening of traditional antidiabetic medicinal plants of Mauritius for possible alpha-amylase inhibitory effects in vitro. Phytother Res. 2006; 20(3): 228–31. https://doi.org/ 10.1002/ptr.1839.

Funke I, Melzig MF. Effect of different phenolic compounds on alpha-amylase activity: screening by microplate-reader based kinetic assay. Pharmazie. 2005; 60(10): 796–7.

Al-Chalabi NS, Al-Sawaf RN. Effect of Polyherbs-Mixture Composed of Nigella sativa, Trigonella foenum-graceum, Cyperus rotundus and Teucrium polium on the Levels of Malondialdehyde and Glutathione for Diabetic Patients Type II. Baghdad Sci J. 2013; 10(3): 854–65. https://doi.org/10.21123/bsj.2013.10.3.854-865

Herman WH, Kalyani RR, Wexler DJ, Matthews DR, Inzucchi SE. Response to Comment on American Diabetes Association. Approaches to Glycemic Treatment. Sec. 7. In Standards of Medical Care in Diabetes—2016. Diabetes Care 2016; 39 (Suppl. 1): S52–S59. Diabetes Care. 2016 Jun 1; 39(6): e88-9. https://doi.org/ 10.2337/dci16-0003

Abduljabbar, A. A., & Abdoulrahman, K. K. Onion (Allium Cepa) and Garlic (Allium Sativa L,) Oil effects on Blood Glucose Levels and Body Weight of Local Quails in Erbil Province. Zanco J. of Pure and Applied Sc. 2018; 30(5): 158–167. https://doi.org/10.21271/zjpas.30.5.14

Knyazev MS. Review of the genus Astragalus section Helmia (Fabaceae). Nov Sist Vyss Rastenii. 2019; (50): 120–31. https://doi.org/ 10.31111/novitates/2019.50.120

Shahrajabian Mh. A Review of Astragalus Species as Foodstuffs, Dietary Supplements, A Traditional Chinese Medicine and A Part of Modern Pharmaceutical Science. Appl Ecol Environ Res. 2019; 17 (6):13371-13382. https://doi.org/ 10.15666/aeer/1706_1337113382

Sevimli-Gür C, Onbaşılar İ, Atilla P, Çakar N, Deliloğlu-Gürhan İ, Bedir E. Wound healing effects of cycloartane-type triterpenes isolated from Astragalus species. Planta Med. 2009; 75(09): PA57.

Huang L, Yao Y, Li J, Zhang S, Li W, Dong N, et al. The effect of Astragaloside IV on immune function of regulatory T cell mediated by high mobility group box 1 protein in vitro. Fitoterapia. 2012; 83(8): 1514–22. https://doi.org/10.1055/s-0029-1234382

Zengin G, Ceylan R, Guler O G, Carradori S, Uysal S, Aktumsek A. Enzyme inhibitory effect and antioxidant properties of Astragalus lagurus extracts. Curr Enzym Inhib. 2016; 12(6): 177–82. https://doi.org/10.2174/1573408012666160127231058

Li H, Zhou X, Wu M, Deng M, Wang C, Hou J, et al. The cytotoxicity and protective effects of Astragalus membranaceus extracts and butylated hydroxyanisole on hydroxyl radical-induced apoptosis in fish erythrocytes. Anim Nutr. 2016; 2(4): 376–82. https://doi.org/10.1016/j.aninu.2016.08.004

Li WL, Zheng HC, Bukuru J, De Kimpe N. Natural medicines used in the traditional Chinese medical system for therapy of diabetes mellitus. J Ethnopharmacol. 2004; 92(1): 1–21. https://doi.org/10.1016/j.jep.2003.12.031

Tchamadeu MC, Dzeufiet PD, Nana P, Nouga CK, Tsofack FN, Allard J, et al. Acute and sub-chronic oral toxicity studies of an aqueous stem bark extract of Pterocarpus soyauxii Taub (Papilionaceae) in rodents. J Ethnopharmacol. 2011 Jan 27;133(2):329-35. https://doi.org/10.1016/j.jep.2010.09.035.

Sharif HB, Mukhtar MD, Mustapha Y, Baba G, Lawal AO. Acute and Subchronic Toxicity Profile of Euphorbia pulcherrima Methanol Extract on Wistar Albino Rats. Adv Pharm. 2015; 2015: 1–9.

da Silva Moreira S, Tamashiro LK, Jorge BC, da Silva Balin P, Heredia-Vieira SC, de Almeida GL, et al. Toxicological safety evaluation in acute and 28-day studies of aqueous extract from Serjania marginata Casar. (Sapindaceae) leaves in rats. J Ethnopharmacol. 2019; 231: 197–204. https://doi.org/1010.1016/j.jep.2018.11.024.

Guengerich FP. Mechanisms of drug toxicity and relevance to pharmaceutical development. Drug Metab Pharmacokinet. 2011; 26(1): 3–14. https://doi.org/10.2133/dmpk.dmpk-10-rv-062

Brígido HPC, Varela ELP, Gomes ARQ, Bastos MLC, de Oliveira Feitosa A, do Rosário Marinho AM, et al. Evaluation of acute and subacute toxicity of ethanolic extract and fraction of alkaloids from bark of Aspidosperma nitidum in mice. Sci Rep. 2021 ;11(1): 18283. https://doi.org/10.1038/s41598-021-97637-1

Morris-Schaffer K, McCoy MJ. A Review of the LD50 and Its Current Role in Hazard Communication. ACS Chem Heal Saf. 2021; 28(1): 25–33.https://doi.org/10.1021/acs.chas.0c00096

Chauhan CK, Joshi MJ, Vaidya AD. Growth inhibition of struvite crystals in the presence of herbal extract Commiphora wightii. J Mater Sci Mater Med. 2009 Dec; 20(1): 85-92. https://doi.org/ 10.1007/s10856-008-3489-z

.

Ahmed Aj.Jabbar, Fuad O. Abdullah, Kamaran K. Abdulrahman, Yaseen Galali, A. S. S.. Papaver Decaisnei : GC-MS Alkaloids Profiling , in Vitro Antioxidant , and Anticancer Activity. Research Square, 1–18. https://doi.org/10.21203/rs.3.rs-1207324/v2.

Ani emmanuel, Adekunle AA, Aboluwade JB, Ibrahim O. EX-SITU Characterization of Luffa aegyptaica in Lagos State, Nigeria. Baghdad Sci J. 2020; 17(3 Suppl.): 946-952. https://doi.org/10.21123/bsj.2020.17.3(Suppl.).0946

Wang W, Dong Z, Zhang J, Zhou X, Wei X, Cheng F, et al. Acute and Subacute Toxicity Assessment of Oxyclozanide in Wistar Rats. Front Vet Sci. 2019; 6: 294. https://doi.org/ 10.3389/fvets.2019.00294

Platikanov S, Nikolov S, Pavlova D, Evstatieva L, Popov S. Volatiles from four Astragalus species: phenological changes and their chemotaxonomical application. Z Naturforsch C. 2005; 60(7–8): 591–9.

Butkutė B, Dagilytė A, Benetis R, Padarauskas A, Cesevičienė J, Olšauskaitė V, et al. Mineral and phytochemical profiles and antioxidant activity of herbal material from two temperate Astragalus species. Biomed Res Int. ID 6318630. https://doi.org/10.1155/2018/6318630

Teyeb H, Houta O, Najjaa H, Lamari A, Neffati M, Douki W, et al. Biological and chemical study of Astragalus gombiformis. Z Naturforsch C. 2012; 67(7–8): 367–74. https://doi.org/10.1515/znc-2012-7-803

Świętek M, Lu Y-C, Konefał R, Ferreira LP, Cruz MM, Ma Y-H, et al. Scavenging of reactive oxygen species by phenolic compound-modified maghemite nanoparticles. Beilstein J Nanotechnol. 2019; 10: 1073–88. https://doi.org/10.3762/bjnano.10.108

Jabbar AA, Saeed CH, Abdulaziz SM, Mahmood BJ. Chemical Differentiation and Antimicrobial Potential of Four Brassica napus L Seed Oils. Iraqi J Sci. 2021 Dec; 30: 4597-613. https://doi.org/10.24996/ijs.2021.62.12.1

Abudoulrahman KK, Mustafa MA, Abduljabbar AA. The Effect of Heat Stress on Oxidative Stress and Antioxidant Status in Local Quail Hens Supplemented with Onion and Garlic Oils. Tikrit J Agric Sci. 2019 Apr 8; 19(1): 103-10. DOI: http://dx.doi.org/10.25130/tjas.v19i1.356

Jabbar AA. Gastroprotective and Immuno-Supportive Role of Alcea kurdica against Stress Induced Lesion in Japanese Quails. Baghdad Sci J 2022; 19(4):716–724. https://doi.org/10.21123/bsj.2022.19.4.0716

Jabbar, A. A., Abdullah, F. O., Abdulrahman, K. K., Galali, Y., & Sardar, A. S. GC-MS Analysis of Bioactive Compounds in Methanolic Extracts of Papaver decaisnei and Determination of Its Antioxidants and Anticancer Activities. J. of Food Quality. 2022; 2022: 1405157. https://doi.org/10.1155/2022/1405157

. Panche AN, Diwan AD, Chandra SR. Flavonoids: an overview. J Nutr Sci. 2016; 5: e47.

Paponov IA, Budnyk V, Paponov M, Teale W, Palme K. Butylated Hydroxytoluene (BHT) Inhibits PIN1 Exocytosis from BFA Compartments in Arabidopsis Roots. Front Plant Sci. 2020; 11: 393. https://doi.org/10.3389/fpls.2020.00393

Dehghani N, Afsharmanesh M, Salarmoini M, Ebrahimnejad H, Bitaraf A. Effect of pennyroyal, savory and thyme essential oils on Japanese quail physiology. Heliyon. 2018; 4(10): e00881. https://doi.org/10.1016/j.heliyon.2018.e00881

. Brglez M E, Knez H M, Škerget M, Knez Ž, Bren U. Polyphenols: Extraction Methods, Antioxidative Action, Bioavailability and Anticarcinogenic Effects. Molecules. 2016 Jul; 21(7): 901. https://doi.org/ 10.3390/molecules21070901

Shahidi F, Yeo J. Bioactivities of Phenolics by Focusing on Suppression of Chronic Diseases: A Review. Int J Mol Sci. 2018; 19(6): 1573.

Auyeung KK, Han Q-B, Ko JK. Astragalus membranaceus: A Review of its Protection Against Inflammation and Gastrointestinal Cancers. Am J Chin Med. 2016; 44(1): 1–22. https://doi.org/10.1142/S0192415X16500014

Wang D, Zhuang Y, Tian Y, Thomas GN, Ying M, Tomlinson B. Study of the Effects of Total Flavonoids of Astragalus on Atherosclerosis Formation and Potential Mechanisms. Oxid Med Cell Longev. 2012 Jan 29; 2012: 1-10 https://doi.org/10.1155/2012/282383

Albayrak S, Kaya O. Antioxidant and antimicrobial activities of four Astragalus species growing wild in Turkey. Turkish J. Biochem.2018 Aug 1; 43(4): 425-34. https://doi.org/10.1515/tjb-2017-0241

Taj S, Irm M, Jin M, Yuan Y, Andriamialinirina HJT, Zhou Q. Effects of Dietary Carbohydrate to Lipid Ratios on Growth Performance, Muscle Fatty Acid Composition, and Intermediary Metabolism in Juvenile Black Seabream (Acanthopagrus schlegelii). Front Physiol. 2020; 11: 507. https://doi.org/10.3389/fphys.2020.00507

Murbach TS, Glávits R, Endres JR, Hirka G, Vértesi A, Béres E, et al. Toxicological Evaluation of a Mixture of Astragalus membranaceus and Panax notoginseng Root Extracts (InnoSlim®). J Toxicol. 2019;2019: 5723851. https://doi.org/10.1155/2019/5723851

Song J, Lee D, Min B, Bae JS, Chang GT, Kim H. Safety evaluation of Astragalus extract mixture HT042 and its constituent herbs in Sprague-Dawley rats. Phytomedicine. 2017;32:59-67. https://doi.org/10.1016/j.phymed.2017.03.005

التنزيلات

منشور

2023-02-01

إصدار

القسم

article

كيفية الاقتباس

1.
الملف الكيميائي النباتي، مضادات الأكسدة، مثبط الإنزيم ونشاط السمية الحادة من Astragalus bruguieri. Baghdad Sci.J [انترنت]. 1 فبراير، 2023 [وثق 23 نوفمبر، 2024];20(1):0157. موجود في: https://bsj.uobaghdad.edu.iq/index.php/BSJ/article/view/6769

المؤلفات المشابهة

يمكنك أيضاً إبدأ بحثاً متقدماً عن المشابهات لهذا المؤلَّف.