عزل وتنمية الخلايا الجذعية العصبية في المختبر

المؤلفون

  • Maeda H. Mohammad قسم العلاج التجريبي, المركز العراقي لبحوث السرطان والوراثة الطبية, الجامعة المستنصرية, العراق. https://orcid.org/0000-0002-0877-2780
  • Aous Kahtan Almzaien قسم العلاج التجريبي, المركز العراقي لبحوث السرطان والوراثة الطبية, الجامعة المستنصرية, العراق. https://orcid.org/0000-0002-3283-9754
  • Ahmad A. Al-Joubory مستشفى العلوم العصبية, بغداد, العراق.
  • Ahmed M. Al-Shammari قسم العلاج التجريبي, المركز العراقي لبحوث السرطان والوراثة الطبية, الجامعة المستنصرية, العراق. https://orcid.org/0000-0002-2699-1514
  • Ayser A. Ahmed قسم العلاج التجريبي, المركز العراقي لبحوث السرطان والوراثة الطبية, الجامعة المستنصرية, العراق.
  • Hiba K. Shaker قسم العلاج التجريبي, المركز العراقي لبحوث السرطان والوراثة الطبية, الجامعة المستنصرية, العراق.
  • Aseel K. Abedalsattar قسم العلاج التجريبي, المركز العراقي لبحوث السرطان والوراثة الطبية, الجامعة المستنصرية, العراق.

DOI:

https://doi.org/10.21123/bsj.2022.7280

الكلمات المفتاحية:

حفظ الخلايا بالتجميد ، العزل، النستين، الخلايا الجذعية العصبية، الغلاف العصب، الخلايا الجذعية

الملخص

     الخلايا الجذعية العصبية (NSCs) هي خلايا مولدة لديها القدرة على التجديد الذاتي والقدرة على التمايز إلى خلايا عصبية نجمية astrocytes ، وخلايا عصبية قليلة التفرع  oligodendrocyte، و خلايا عصبية neuron . في هذه الدراسة تم عزل الخلايا الجذعية في المختبر ، وتنميتها في المختبر ، وتحديد هويتها ، ومن ثم انتاج الخلايا الجذعية العصبية وحفظها بالنيتروجين السائل كمصدر خلايا ناجح لاستخدامها لاحقا في التجارب العلاجية. تم استخدام نخاع عظم الفأر كمصدر للخلايا الجذعية العصبية في هذه الدراسة. أظهرت نتائج دراسة الشكل المظهري والكيمياء المناعية للخلايا المعزولة أنه يمكننا إنتاج الخلايا الجذعية العصبية NSCs بنجاح والحفاظ على تجديدها الذاتي وتشكيلها بنجاح في الغلاف العصبي ولتمريرات متعددة. تم الحفاظ على الشكل المظهري للخلايا الناتجة وتخزينها في النيتروجين السائل لتكون مصدرا جاهزا للاستخدام في التجارب كنموذج لعلاج الاضطرابات العصبية.

المراجع

Chloé J H, Debbie L B, Alessandra Q, Jasmijn D, Herman G, Zwi B. at al. Concise review: Innate and adaptive immune recognition of allogeneic and xenogeneic cell transplants in the central nervous system. Stem Cells Transl Med 2017; 6(5): 1434-1441. https://doi.org/10.1002/sctm.16-0434 .

Alessandrini M, Preynat-Seauve O, de Bruin K, Pepper M S. Stem cell therapy for neurological disorders. S Afr Med J 2019; 109 (8 Suppl 1): S71-S78. https://doi.org/ 10.7196/SAMJ.2019.v109i8b.14009.

Neethu J. Stem Cell Therapy. Int J Immunol Nurse. 2017; 3(2): 32–44. https://www. researchgate. net/publication/322420850_Stem_Cell _Therapy.

Marsh SE, Blurton-Jones M. Neural stem cell therapy for neurodegenerative disorders: The role of neurotrophic support. Neurochem Int. 2017 Jun;106: 94-100. doi: 10.1016/j.neuint.2017.02.006. Epub 2017 Feb 20. PMID: 28219641; PMCID: PMC5446923. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC5446923/.

Jennifer S, Xili D, Aijun W, Song L. Neural crest-like stem cells for tissue regeneration. Stem Cells Transl Med. 2021; 10(5): 681–693. https://doi.org/ 10.1002/sctm.20-0361.

Rafal H A, Nahi Y Y, Shahlla M S, Maeda H M, Ahmed M A. Direct and simple method for mesenchymal stem cells isolation, culturing and detection. Int J Stem Cell Res Ther. 2018; 5 (2): 054. https://doi.org/10.23937/2469-570X/1410054 .

Amanda C D, Freshney R I. Culture of Animal Cells: A Manual of Basic Technique and Specialized Applications. 8th Ed. Juhn wiley and sons, Inc. Pup. New York. 2021; PP: 297-325. ISBN: 978-1-119-51304-9.

Maeda HM, Al-Shammari AM, Al-Juboory AA, Yaseen N Y. Characterization of neural stemness status through the neurogenesis process for bone marrow mesenchymal stem cells. Stem Cells Cloning 2016; 9: 1–15.

Philippe T, Fred HG .Adult Neurogenesis and Neural Stem Cells of the Central Nervous System in Mammals. J Neurosci Res. 2002; 69: 745–749.

Yang DT, Filipe NCS, Peter MB, Deniz K, Kook IP, Richard LS, et al. Neural Stem Cells IN Principles of Regenerative Medicine. 2008; PP: 300-317. https://www.sciencedirect.com/ science/article/pii/B9780123694102500206.

William AH, Volker H, Martyn G. Cellular Determination IN. Fundamental Neuroscience.4th Ed 2013; Ch. 14. PP: 309-337.https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/ B9780123858702000147.

Hengxing Z, Huan Y, Lu L, Xueying L, Bin P, Zheng F, et al. A modified protocol for the isolation, culture, and cryopreservation of rat embryonic neural stem cells. Exp Ther Med. 2020; 20: 156. DOI: 10.3892/etm.2020.9285.

Azari H, Louis SA, Sharififar S, Vedam-Mai V, Reynolds BA. Neural-Colony Forming Cell Assay: An Assay To Discriminate Bona Fide Neural Stem Cells from Neural Progenitor Cells. J Vis Exp. 2011; (49), e2639, doi:10.3791/2639.

Maeda H M, Ahmed M A, Rafal H A, Aesar A A, Aseel K A. Differentiation of Adipose-Derived Mesenchymal Stem Cells into Neuron-Like Cells induced by using β-mercaptoethanol. Baghdad Sci J. 2020, 17 (1) Supplement (March): 235-243. E-ISSN: 2411-7986. https://dx.doi.org/10.21123/bsj.2020.17.1(Suppl.).0235.

Ahmed K M A, Toke Jost I, Toshihide Y. Protocol for mouse adult neural stem cell isolation and Culture. Star Protoc. Cell Press. 2021; 2: 100522. https://doi.org/ 10.1016/j.xpro.2021.100522.

Shuhui Y, Zheng C, Jinjin Z, Zhe Z, He Z, Lingyun Z, et al. In Vitro Monolayer Culture of Dispersed Neural Stem Cells on the E‑Cadherin-Based Substrate with Long-Term Stemness Maintenance. ACS Omega. 2019; 4: 18136−18146. https://doi.org/10.1021/acsomega.9b02053

التنزيلات

منشور

2023-06-01

إصدار

القسم

article

كيفية الاقتباس

1.
عزل وتنمية الخلايا الجذعية العصبية في المختبر. Baghdad Sci.J [انترنت]. 1 يونيو، 2023 [وثق 20 مايو، 2024];20(3):0787. موجود في: https://bsj.uobaghdad.edu.iq/index.php/BSJ/article/view/7280

المؤلفات المشابهة

يمكنك أيضاً إبدأ بحثاً متقدماً عن المشابهات لهذا المؤلَّف.