تأثير مستخلصات لحاء جذع ألستونيا على نشاط إنزيمات المصنعة بالكبد في الفئران التي تستحثها
محتوى المقالة الرئيسي
الملخص
بحثت هذه الدراسة في نتائج لحاء جذع ألستونيا بوناي على إنزيمات الكبد بعد تحريض فئران ويستار البيضاء باستخدام رباعي كلوريد الكربون (CCl4). تمت مقارنة تأثير المستخلصات النباتية مع سيليمارين - وهو دواء شائع الاستخدام لعلاج اضطراب خلايا الكبد المزمن. تم استخلاص العينة النباتية مع الإيثانول. تم إجراء دراسة السمية الحادة للمستخلص على ثمانية عشر فأر من Wistar ، بينما تم التضحية بـ 30 جرذاً لفحص إنزيمات الكبد. تم تقسيم الجرذان إلى ست مجموعات: كل مجموعة بها خمسة فئران ، و culster 1 بمثابة مجموعة تحكم وأعطيت 2 مل / كجم من وزن الجسم - ماء مقطر ؛ المجموعات 2-6 كانت مستحثه من CCl. لم يتم علاج المجموعة 2 ولكنها كانت بمثابة عنصر تحكم سلبي بينما أعطيت المجموعة 3 0.025 مل أو 25 كجم / كجم من وزن الجسم من سيليمارين ، والذي كان دواءً عاديًا ومساعدًا كعنصر تحكم عادي. تم إعطاء الجرذان في المجموعات 4-6 - 100 و 200 و 500 ملغم / كغم على التوالي من مستخلص الإيثانول لمدة أربعة عشر يومًا. أظهرت نتائج السمية الحادة لمستخلص A. boonei التحصين النسبي نتيجة عدم حدوث موت أو استجابات عدائية بعد 24 ساعة من إعطاء المستخلص. زيادة كبيرة (P 0.05) في عمل ALT بعد إعطاء 500 مجم / كجم يثبت أن السمية الأقل كانت جرعة أكبر. عند جرعة منخفضة من المستخلص ، يشير الارتفاع غير الهام (p 0.05) في تأثير AST إلى أن المستخلص كان غير ضار إلى حد ما مع عدم وجود سمية كبدية عند تناول الأدوية المنخفضة. يشير الانخفاض الكبير في تأثير الفوسفاتيز القلوي في المجموعة 3 من الفئران المستحدثة باستخدام CCl4 والمُعطاة مع Silymarin ، جنبًا إلى جنب مع المجموعات 4 - 6 التي تم تحفيزها باستخدام CCl4 وتم إعطاؤها بجرعات متدرجة من مستخلص لحاء جذع A. boonei ، مما يشير إلى وجود خصائص واقية للكبد.
Received 28/2/2021
Accepted 27/7/2021
Published Online First 20/3/2022
تفاصيل المقالة
هذا العمل مرخص بموجب Creative Commons Attribution 4.0 International License.
كيفية الاقتباس
المراجع
Cragg G, Newman DJ. Biodiversity: a continuing source of novel drug leads. Pure Appl Chem. 2005;77(1):7–24. https://doi.org/10.1351/pac200577010007
Rufai SO, Olaniyi MB, Lawal IO. Evaluation of heavy metals in some selected medicinal plants growing within the University of Ibadan Campus. J med plant econ Dev. 2019: 3(1):a63. https://doi.org/10.4102/jomped.v3i1.63.
Derkach T, Khomenko V. Elemental Composition of the Medicinal Plants Hypericum perforatum, Urtica dioica and Matricaria chamomilla Grown in Ukraine: A Comparative Study. J Pharmacogn, 2018: 10(3):486–91. https://doi.org/10.5530/pj.2018.3.80
Akinmoladun AC, Ibukun EO, Afor E. Chemical constituents and antioxidant activity of Alstonia boonei. Afr J Biotechnol. 2007; 6(10); 1197–201.
Zongtai L, Dexi L, Lijie Z, Linghao L. Mineral Elements and Active Ingredients in Root of Wild Paeonia lactiflora Growing at Duolun County, Inner Mongolia. Biol Trace Elem Res. 2019; https://doi.org/10.1007/s12011-019-01725-3 PMID: 30997668.
Koduru S, Grierson DS, Afolayan AJ. Antimicrobial activity of Solanum aculeastrum (Solanaceae). Pharm Biol. 2006;44(4):284–6. https://doi.org/10.1080/13880200600714145.
Aida YT, Irina SD, Eduard VB, Anzhela AG. Bioaccumulation of Heavy Metals by Medicinal Plants of the Inula Genus. J Pharm Sci. Res. 2018;10(5):1263–6.
Igbinosa OO, Igbinosa EO, Aiyegoro OA. Antimicrobial activity and phytochemical gel: A review update. J Ethnopharmacol. 2009; 68, 3–37
Marian AN, Samuel TH, Lawrence SB, James HE. Heavy metal contents of some medicinal herbs from Kumasi, Ghana. Cogent Environ Sci. 2016;2:1234660. https://doi.org/10.1080/23311843.2016.1234660.
Farrugia A. Albumin usage in clinical medicine: tradition or therapeutic? Transfus Med Rev. 2010 Jan;24(1):53–63. https://doi.org/10.1016/j.tmrv.2009.09.005 PMID:19962575
Muhammad A, Muhammad A, Shaheen B, Azizullah A, Ruqia N, Shazia I. A review on the elemental contents of Pakistani medicinal plants: Implications forfolk medicines. J Ethnopharmacol, 2016; 188, 177–192.
Lorke D. A new approach to practical acute toxicity testing. Arch Toxicol. 1983 Dec;54(4):275–87. https://doi.org/10.1007/BF01234480 PMID:6667118
Glavač NK, Djogo S, Ražić S, Kreft S, Veber M. Accumulation of heavy metals from soil in medicinal plants. Arh Hig Rada Toksikol. 2017 Sep;68(3):236–44. https://doi.org/10.1515/aiht-2017-68-2990 PMID:28976884
Olateju DA. deyolanu OJK, Kayode SA, Gabriel AO, Manuel TMoral. Lead and cadmium contents in a medicinal plant/spice grown in an urban city of Nigeria. Cogent Food Agric. 2016; 2:1136016.
Suk KT, Kim MY, Baik SK. Alcoholic liver disease: treatment. World J Gastroenterol. 2014 Sep; 20(36):12934–44. https://doi.org/10.3748/wjg.v20.i36.12934 PMID:25278689
Uroko RI, Sangodare RS, Mohammad KH, Asadu CL. Effects of methanol extract of A. Pretorius leaves on male Wistar albino rats induced liver damage using carbon tetrachloride. J Biol Sci. 2015;15(3):116–23. https://doi.org/10.3923/jbs.2015.116.123
Goda N, Tachibana A, Okazawa G, Komatsu H. Representation of the material properties of objects in the visual cortex of nonhuman primates. J Neurosci. 2014 Feb;34(7):2660–73. https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.2593-13.2014 PMID:24523555
Samali A, Mohammed MI, Ibrahim MB. Analysis of Heavy Metals Concentration in Kano Herbal Preparations for Major Disease Conditions. Chem Search J. 2017;8(2):22–8.
Adie GU, Adekunle A. Evaluation of Potentially Toxic Metal Contamination of Local Medicinal Plants and Extracts Sold in Ibadan, Nigeria. J Health Pollut. 2017 Jun;7(14):23–9. https://doi.org/10.5696/2156-9614-7.14.23 PMID:30524819
Candy CÁ, Ángel JA, Juan JM, Alejandro HM. Quantitation of Cd, Pb and Fe in three medicinal plants (Justicia spicigera, Arnica montana and Hamelia pantens) from environmentally diverse locations of Huasteca Potosina. Mexico: Acta Univ; 2016. https://doi.org/10.15174/au.2016.984
Karahan F, Ozyigit II, Saracoglu IA, Yalcin IE, Ozyigit AH, Ilcim A. Heavy Metal Levels and Mineral Nutrient Status in Different Parts of Various Medicinal Plants Collected from Eastern Mediterranean Region of Turkey. Biol Trace Elem Res. 2019. https://doi.org/10.1007/s12011-019-01974-2 PMID: 31758293.
Uroko RI, Okpashi VE, Bayim PRB, Anthony UO, Ucho KM. Dietary effect of Alstonia Boonei Stem Bark extract on hematological profiles of Wistar albino rats after inducing oxidative stress with CCl4. Af J Bio.Sc. 2(4) (2020) doi:10.33472/AFJBS.2.4.2020.45-56.